ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر محیط کشت ریزنمونه و سیتوکینینهای مختلف در ریزازدیادی کاج مطبق (Araucaria excelsa R.)
بهمنظور بررسی اثر محیط کشت، ریزنمونه و سیتوکینینها بر کاج مطبق آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در 3 تکرار در دانشگاه بینالمللی امامخمینی(ره) قزوین در سال 1392 اجرا شد. کاج مطبق (Araucaria excelsa) از خانوادۀ آروکاریاسه[1] و بومی جزیرۀ نورفک در استرالیاست. این گیاه بهمنزلۀ یک گیاه زینتی چوبی، ارزش تجاری زیادی دارد. ازآنجاکه این گیاه از طریق بذر تکثیر میشود، دستیابی به یک روش ریزازدیادی برای آن یکی از اهداف مهم در کشت بافت گیاهان چوبی به حساب میآید. بهمنظور بررسی تأثیر محیط کشتها و سیتوکینینها طی فرایند اندامزایی مستقیم برای القای جوانههای جانبی در ریزنمونه[2]ها، از 3 سیتوکینین مختلف (تیدیازرون[3]، کاینتین[4] و 2ip) و 4 محیط کشت (WPM، BE، MS½ و TE) استفاده شد. ریزنمونۀ ساقۀ میانی بهترین ریزنمونه، 2ip بهمنزلۀ بهترین هورمون در القای جوانههای جانبی و همچنین محیط TE و WPM بهترین محیطها برای صفات بررسیشده و ریزازدیادی کاج مطبق هستند. نتایج همبستگی نیز نشاندهندۀ همبستگی مثبت بین تعداد جوانهها، طول جوانهها و 3 شاخص کلروفیل بررسیشده بودند. بهطورکلی، تولید ریزساقهها به نوع هورمون بهکاررفته و محیط کشت بستگی دارد. نتایج ریشهزایی نشان داد که تنها هورمون BAP قادر به تولید ریشه در ریزساقهها بود. لازم به یادآوری است که بررسی مقدار کلروفیل و همچنین تعیین بهترین محیط کشت، برای اولینبار در کاج مطبق گزارش میشود.
[1]. Araucariaceae
[2]. Explant
[3]. Thidiazuron
[4]. Kinetin
https://jacb.ut.ac.ir/article_54540_2f8bd3c8cbb33dc3b8a63fccce1870c9.pdf
2015-03-21
1
12
آروکاریا
اندامزایی
ریشهزایی
کلروفیل
هورمون
میترا
تقی پور
mitra_taghipoor@yahoo.com
1
کارشناس ارشد بیوتکنولوژی کشاورزی، گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکدۀ فنی و مهندسی، دانشگاه بین المللی امامخمینی(ره)، قزوین
AUTHOR
رحیم
حداد
raheemhaddad@yahoo.co.uk
2
دانشیار گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکدۀ فنی و مهندسی، دانشگاه بین المللی امامخمینی(ره)، قزوین
LEAD_AUTHOR
مریم
قنادنیا
ghannadnia_ma@yahoo.com
3
استادیار گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکدۀ فنی و مهندسی، دانشگاه بین المللی امامخمینی(ره)، قزوین
AUTHOR
1. اثنیالعشری م، کریمی ا و محمودپور ع (1386) «تولید پینه از ریزنمونههای کاج مطبق ((Araucaria excelsa L. در شرایط درونشیشهای». علوم کشاورزی ایران. 38(4): 659ـ 664.
1
2. تقیپور م (1392) ریزازدیادی کاج مطبق (.Araucaria heterophylla L) از طریق جنینهای زایشی. دانشگاه بینالمللی امامخمینی(ره). قزوین. پایاننامۀ کارشناسی ارشد.
2
3.محمودی ح (1388) «جنینزایی سوماتیکی در کاج مطبق (.Araucaria heterophylla L)». دانشگاه بینالمللی امامخمینی(ره). قزوین. پایاننامۀ کارشناسی ارشد.
3
4.ArnonDI (1949) Copper enzymes in isolated chloroplasts. Poly phenol oxide in (Beta vulgaris).Plant Physiology. 24: 1-15.
4
5. Brinker M, Zyl LV, Liu W, Craig D, SederoffRR, Clapham DH and Arnold SV(2004) Microarray Analyses of Gene Expression during Adventitious Root Development in Pinuscontorta. Plant Physiology135 (3): 1526-1539.
5
6. Burrows G, DoleyDD, Haines RJ and Nikles DG (1988) In vitro propagation of Araucaria cunninghamii and other species of the Araucariaceae via axillary meristems. Australian Journal of Botany. 36(6): 665-676.
6
7.Cortizo M, De Diego N, MoncaleánP, and Ordás RJ (2009) Micropropagation of adult stone pine (Pinus pinea L.). Trees Structure and Function. 23(4): 835-842.
7
8. De Diego N, Montalbán I and Moncaleán P (2010) In vitro regeneration of adult Pinus sylvestris L. trees. South African Journal of Botany. 76(1): 158-162.6.
8
9.Dobranszki Jand DrienyovszkiNM (2014) Cytokinin-induced changes in the chlorophyll content and fluorescence of in vitro apple leaves. Journal of Plant Physiology.171 (16): 1472–1478.
9
10.Humanez A, Blasco M, Brisa C, Segura J and Arrillaga I (2011) Thidiazuron enhances axillary and adventitious shoot proliferation in juvenile explants of Mediterranean provenances of maritime pine (Pinus pinaster). In vitro Cellular & Developmental Biology Plant. 1-9.
10
11. Kaul K and Sabharwal P (1971) Effects of sucrose and kinetin on growth and chlorophyll synthesis in tobacco tissue cultures. Plant Physiology. 47(5): 691-695.
11
12. Lloyd G and McCown B (1980) Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifoliaby use of shoot tip culture. Proc. Intl. Plant Prop. Soc., 30: 421-427.
12
13.Murashing T and Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:473-479.
13
14. Murthy B, Murch S and Saxena P (1998) Thidiazuron: a potent regulator of in vitro plant morphologenesis. In vitro Cellularand Developmental Biology Plant. 34: 267-275.
14
15.RagoneziC,KlimaszewskaK, CastroMR, LimaM, de OliveiraP and ZavattieriMA (2010) Adventitious rooting of conifers: influence of physical and chemical factors.Trees. 24(6): 975-992.
15
16.Sabovljevi A, Sabovljevi M and Vukojevi V (2010) Effects of different cytokinins onchlorophyll retentionin the moss Bryumargenteum(Bryaceae). PeriodicumBologorum. 112 (3): 301–305.
16
17.Sarmast KM, Salehi H and Khosh- Khui M (2009) using plagiotropic shoot explants in tissue culture of Araucaria excelsa R. Br. var. glauca. Advances in Environmental Biology. 3(2): 191-194.
17
18.Sarmast KM, Salehi H Ramezani A, Abolimoghadam AA Niazi A andKhosh-Khui, M (2012) RAPD fingerprint to appraise the genetic fidelity of in Vitro propagated Araucaria excelsa R. Br. var. glauca plantlets. Molecular Biotechnology.1-8.
18
19.Sarmast KM, Salehi H and Khosh- Khui M (2012) Micropropagation of Araucaria excelsa R. Br. var. glauca Carrière from orthotropic stem explants. Physiology and Molecular Biology of Plants. 1-7.
19
20. Santo ALW, Silveira V, Steiner N, Vidor M and Guerra M.P (2002) Somatic embryogenesis in parana pine (Araucaria angustifolia (Bert.) O. Kuntze). Brazilian Archives of Biology and Technology. 45(1): 97-106.
20
21. Stojicic D, Budimir S and Ćulafić L (1999) Micropropagation of Pinus heldreichii. Plant Cell, Tissue and Organ Culture.59 (2): 147-150.
21
22. Sul IIIW and Korban SS (2004) Effects of salt formulations, carbon sources, cytokinins, and auxin on shoot organogenesis from cotyledons of Pinus pinea L. Plant Growth Regulation. 43(3): 197-205.
22
23. Tang W, Newton RJ and Charles TM (2006) Plant regeneration through multiple adventitious shoot differentiation from callus cultures of slash pine (Pinus elliottii). Journal of Plant Physiology. 163 (1): 98-101.
23
24. Tang W, Newton RJ (2005) Peroxidase and catalase activities are involved in direct adventitious shoot formation induced by thidiazuron in eastern white pine (Pinus strobus L.) zygotic embryos. Plant Physiology and Biochemistry. 43(8): 760-769.
24
25. Vieira LN, Santa CC Fraga HPF, Santos ALW, SteinmacherDA, Schlogl PS, Silveira V, Steiner N, Floh EIS and Guerra MP (2012) Glutathione improves early somatic embryogenesis in Araucaria angustifolia (Bert) O. Kuntze by alteration in nitric oxide emission. Plant Science.DOI: 10.1016/j.plantsci.2012.06.011.
25
26. Yew CK, Balakrishnan B, Sundasekaran J and Subramaniam S (2010) The effect of cytokinins on invitro shoot length and multiplication of Hymenocallislittoralis. Journal of Medicinal Plants Research 4(24): 2641-2646.
26
27. Zhang H, Horgan KJ, Reynolds PHS and Jameson PE (2010) 6-Benzyladenine metabolism during reinvigoration of mature Pinus radiata buds in vitro. Tree Physiology. 30(4): 514-526.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی و تحلیل عاملی برای عملکرد و برخی ویژگی های مورفولوژیکی در رقمهای توت فرنگی
بهمنظور بررسی تنوع ژنتیکی، تحلیل عاملی و وراثتپذیری عملکرد و برخی ویژگیهای مورفولوژیکی، آزمایشی با 20 رقم توتفرنگی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 3 تکرار، در مرکز پژوهشهای کشاورزی کردستان در سالهای 1390 و 1391 انجام شد. تمام ویژگیهای اندازهگیری شده تفاوت معناداری در سطح احتمال 1 درصد نشان دادند که بیانگر وجود تنوع ژنتیکی بین رقمهای مطالعهشده است. بیشترین ضریب تنوع ژنتیکی مربوط به تعداد میوه در بوته، تعداد گل در بوته و عملکرد بود. بیشترین ضریب تنوع فنوتیپی مربوط به تعداد میوه در بوته، تعداد رانر و تعداد گل در بوته بود. بیشترین درصد وراثتپذیری عمومی مربوط به تعداد گل در بوته، تعداد میوه در بوته و عملکرد بود و کمترین مقدار وراثتپذیری به تعداد رانر و سطح برگ اختصاص داشت. نتایج تجزیه به عاملها، 15 ویژگی مطالعهشده را در قالب 4 متغیر جدید (4 عامل) گروهبندی کرد که این عاملها 83/83 درصد از تغییرات کل را توجیه کردند. نتایج تفکیک ویژگیهای بررسیشده براساس بایپلات عامل اول در مقابل عامل دوم تأییدکنندۀ توانایی مؤثر تجزیه به عاملها برای تفکیک ویژگیها بود و تفکیک رقمها از نظر ویژگیهای اندازهگیری شده بهخوبی توسط تجزیه به عاملها صورت گرفت. همچنین رقم ’کویینالیزا‘ از نظر بیشترین ویژگیها، نسبت به سایر رقمها برتری نشان داد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54493_679659181a9b543c100fd090d8a242ec.pdf
2015-03-21
13
26
آمار توصیفی
بایپلات
توتفرنگی
ضریب تنوع
گروهبندی
اسماعیل
عرب طاژان دره
smailarab1367@gmail.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد گروه تولیدات گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
AUTHOR
عبدالحسین
رضایی نژاد
rezaeinejad.hossein@gmail.com
2
استادیار گروه تولیدات گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
LEAD_AUTHOR
احمد
اسماعیلی
ahmad_ismaili@yahoo.com
3
استادیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
AUTHOR
فرهاد
کرمی
farhad.karami@gmail.com
4
مربی پژوهشی بخش به زراعی نهال و بذر، مرکز تحقیقات جهاد کشاورزی و منابع طبیعی استان کردستان
AUTHOR
اسدی قارنه ح، ارزانی ک، شجاعیان ع و سرسیفی م (1391) «بررسی عملکرد 15 ژنوتیپ توتفرنگی تجاری در کشت گلخانهای». اولین همایش ملی توتفرنگی کردستان، ایران.
1
امیری اوغان ح، مقدم م، احمدی م ر، ولیزاده م و شکیبا م ر (1381) «وراثتپذیری عملکرد دانه و اجزای عملکرد کلزا در شرایط عادی و تنش خشکی». نهال و بذر، 18(2): 179ـ 199.
2
بینام (1393). آمارنامه محصولات باغی سال 1392. نشر وزارت جهاد کشاورزی، معاونت برنامهریزی و اقتصادی، مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات. 110 صفحه.
3
جلیلی مرندی ر (1384) میوههای ریز. انتشارات جهاد دانشگاهی، ارومیه، چاپ اول، 297 صفحه.
4
رضوی ف (1377) شناسایی ژنوتیپهای بومی در برخی از نقاط استان اصفهان (شهرستان اصفهان، فلاورجان و نطنز) پایاننامۀ کارشناسی ارشد باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس.
5
سرسیفی م (1391) «بررسی اثر استولونهای انبار سرد و استولونهای تازه بر عملکرد کمّی و کیفی هفت ژنوتیپ توتفرنگی». اولین همایش ملی توتفرنگی کردستان، ایران.
6
سرسیفی م (1378) بررسی و مقایسۀ عملکرد ژنوتیپهای توتفرنگی.گزارش نهایی. انتشارات مرکز پژوهشها کشاورزی و منابع طبیعی کردستان.
7
شیخعلی م (1379) بررسی تنوع مورفولوژیکی گونۀ بارانک در جنگلهای تالش پایاننامۀ کارشناسی ارشد جنگلداری، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان.
8
صبور م و علمی غروی ح (1384) اصول و مسائل ژنتیک. تألیف استانسفیلد. چاپ پنجم، ویرایش سوم، مؤسسۀ فرهنگی فاطمی، تهران، 650 صفحه.
9
قرهشیخ بیات ر (1384) مقایسۀ ژنوتیپهای توتفرنگی از نظر کمّی و کیفی در منطقۀ کرج. گزارش نهایی. انتشارات مؤسسۀ اصلاح وتهیۀ نهال و بذر.
10
Ameri AA, Tehranifar M and Davarynejad GhH (2012) Effect of substrate and cultivar on growth characteristic of strawberry in soilless culture system. African Journal of Biotechnology. 11(56): 11960-11966.
11
Burton GW and Devan EH (1953) Estimating heritability in tall fescue (Festuca arundinacea) from replicated clonal material. Agronomy Journal. 45(10): 478-481.
12
Degani C, Rowland L, Saunders J, Hokanson S, Ogden E, Golan-Goldhirsh A and Galletta G (2001) A comparison of genetic relationship measures in strawberry (Fragaria × ananassa Duch.) based on AFLPs, RAPDs, and pedigree data. Euphytica. 117: 1-12.
13
Dhiman K (2003) Studies on genetic variability and selection in strawberry (Fragaria x ananassa Duch.) for yield and quality traits. Hortscience. 11:49-53.
14
Falconer DS (1983) Problems on Quantitative Genetics. Longmans Green. New York.
15
Galletta GJ and Maas JL (1990) Strawberry genetics. Hortscience. 25(8):871– 878.
16
Hakala MA, Lapvetelainen R, Huopalahti HK and Tahvonen R (2003) Effect of varieties and cultivation conditions on the composition of strawberries. Journal of food composition and analysis. (16): 67-80.
17
Hancock JF (1999) Strawberries. CABI, NewYork, USA.237p
18
Hancock JF, Hokanson SC, Callow PW, Sakin M, Haghighi K and Flore JA (1992) Performance of Californian and eastern US strawberry cultivars under conditions mimicking eastern production systems. Journal of the American Society for Horticultural Science. 117(6): 991-995.
19
Hancock JF, Callow PW, Serce S and Son, PQ (2003) Variation in the horticultural characteristics of native Fragaria virginiana and F. chiloensis from North and South America. Journal of the American Society for Horticultural Science. 128(2): 201-208.
20
Janson WA (1997) Growing media and plant densities for strawberry tray plant. Acta Horticulturae. 439: 457-460.
21
Kaith NS, Mehta DK and Bhardwaj JC (2009) Evaluation of different strawberry cultivars for growth, yield and quality characters under wet temperate high hills of Himachal Pradesh. Himachal Journal of Agricultural Research. 35 (2):183-187.
22
Klamkowsky K and Ttreder W (2006) Morphological and physiological response of strawberry plants to water stress. Agriculturae Conspectus Scientificus. 71(4): 159-165.
23
Komar LS (1999) DNA markers in plant improvement: an overview. Biotechnology Advances. 17(2): 143-182.
24
Momenpour A, Taghavi TS and Manochehr Sh (2011) Effects of banzyladenine and gibberellin on runner production and some vegetative traits of three strawberry cultivars. African Journal of Agricultural Research. 6(18): 4357-4361.
25
Pistorale SM, Abbott LA and Adriana A (2008) Genetic diversity and broad sense heritability in tall wheatgrass (Thinopyrum ponticum). Ciencia e Investigación Agraria. 35(3): 259-264.
26
Richard EJ, Harrison JJ, Furnier GR and Hancock JF (2000) Differences in the apportionment of molecular and morphological variation in North American strawberry and the consequences for genetic resource management. Genetic Resources and Crop Evolution. 47(6): 647-657.
27
Strik BC and Proctor JTA (1988) Yield component analysis of strawberry genotypes differing in productivity. Journal of the American Society for Horticultural Science. 113(1):124-129.
28
Subhashchandra B, Lohithaswa HC, Desai AS and Hanchinal RR (2010) Assessment of genetic variability and relationship between genetic diversity and transgressive segregation in tetraploid wheat. Karnataka Journal of Agricultural Sciences. 22(1): 36-38.
29
Suman DK (2000) Genetic variability and character association studies in strawberry. MSc Thesis, Parmar University of Horticulture and Forestry, Nauni-Solan, HP, India.
30
Taiz L and Zeiger E (2010) Plant Physiology, Fifth Edition. Sinauer Associates. Sunderland, MA.
31
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی فامیلهای نیمه خواهری فسکیوی بلند Lolium arundinaceum (Schreb) از نظر صفات مورفولوژیکی و زراعی
بهمنظور ارزیابی صفات زراعی و مورفولوژیکی در فامیلهای نیمهخواهری (پلیکراس) گیاه فسکیوی بلند، بذور حاصل از پلیکراس 25 ژنوتیپ در طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار، در مزرعۀ تحقیقاتی در اصفهان، طی سالهای 1390 و 1391 کشت و ارزیابی شدند. صفات ارزیابیشده شامل تعداد روز تا گردهافشانی، ارتفاع بوته، تعداد ساقۀ بارور، طول و عرض برگ پرچم، طول خوشه، عملکرد بذر در هر بوته و عملکرد علوفۀ خشک بود. بیشترین میانگین عملکرد علوفه برابر 113 گرم و کمترین آن 53 گرم بهترتیب در فامیلهای شمارۀ 25 و 13 مشاهده شد. مقایسههای میانگین عملکرد بذر نشان داد فامیلهای 12 و 2 بیشترین و فامیل 13 کمترین عملکرد بذر در واحد سطح و عملکرد تکبوته را داشتند. وراثتپذیری عمومی عملکرد بذر در بوته و عملکرد بذر در واحد سطح بهترتیب 66 و 32 درصد برآورد شد. براساس نتایج حاصل از تجزیۀ خوشهای، صفات مطالعهشده فامیلهای فسکیوی بلند در 4 گروه قرار گرفتند. تجزیۀ واریانس و مقایسۀ میانگین فامیلها برای صفات مختلف ژنوتیپهای برتر را مشخص کرد. برای بهبود صفت قطر یقه که وراثتپذیری عمومی کمی دارد، تلاقی ژنوتیپهایی از گروه 1 و 3 امکان موفقیت بیشتری دارد، چون این فامیلها میانگین نسبتاً خوب برای این صفت و نیز فاصلۀ ژنتیکی بیشتری با هم دارند که احتمال وقوع هتروزیس را بیشتر میکند. با توجه به وراثتپذیری عمومی بالای صفات ارتفاع بوته و طول خوشه که از اجزای عملکرد هستند، انتخاب فامیلهای گروه سوم برای استفاده در برنامههای اصلاحی آینده سودمند خواهد بود.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54542_b6a18af17a4a2f82d09cfdfc246fcac1.pdf
2015-03-21
27
37
تجزیۀ خوشهای
فامیل نیمهخواهری
فسکیوی بلند
فاطمه
امینی
aminif@ut.ac.ir
1
استادیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
1. ابراهیمیان م (1389) بررسی تحمل به خشکی ژنوتیپهای فسکیوی بلند و نتاج گزینششدۀ آنها از جوامع پلیکراس، دانشگاه صنعتی اصفهان. پایاننامۀ کارشناسی ارشد.
1
2. حسامزاده حجازی م و ضیایینسب م (1387) «بررسی سیتوژنتیکی برخی از جمعیتهای گونههای دیپلوئید جنس Onobrychis موجود در بانک ژن منابع طبیعی ایران». تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران. 16: 158-171.
2
3. مجیدی م م (1386) مطالعات اصلاحی پایه در ژرمپلاسم فسکیوی بلند، دانشگاه صنعتی اصفهان. اصفهان، رساله دکتری.
3
4. مجیدی م م و میرلوحی آ (1387) «تجزیه و تحلیلهای چندمتغیرۀ آماری در ژرمپلاسم فسکیوی بلند ایرانی و خارجی»، علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. 46: 90-77.
4
5. محمدی ر، خیام نکویی م، میرلوحی ا و رزمجو خ (1385) «بررسی تنوع ژنتیکی در جمعیتهای مختلف گونۀ علوفهای مرتعی Bromus intermis Leyss». تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران. 14: 138-147.
5
6. Aastveit AH and Aastveit KM (1990) Theory and application of open-pollination and polycross in forage grass breeding. Theoretical and Applied Genetics. 79: 618-624.
6
7. Allard RW (1960) Principles of Plant Breeding. Inc., New York: John Wiley and Sons. Pp. 485.
7
8. Basafa M and Taherian M (2009) A study of agronomic and morphological variation in certain alfalfa (Medicago sativa L.). Asian Journal of Plant Science. 8: 293-300.
8
9. Fang C, Amlid TS, Jqrgensen Q and Rognil OA (2004) Phenotypic and genotypic variation in seed production traits within a full-sib family of meadow fescue. Plant Breeding. 123: 241-246.
9
10. Joshi SP, Bhave SG, Chowdari KV, Apte GS, Dhonukshe BL, Latitha K, Ranjekar PK and Gupta VS (2001) Use of DNA markers in prediction of hybrid performance and heterosis for a three-line hybride system in rice. Biochemical Genetic. 39: 179-199.
10
11. Kasperbauer MJ (1990) Biotechnology in tall fescue improvement. CRC Press. Inc. Florida. Pp. 199.
11
12. Levesque R (2007), SPSS Programming and Data Management: A Guide for SPSS and SAS Users (4th ed.) Chicago Illinois SPSS Inc.
12
13. Nguyen HT, Sleper DA and Hunt KL (1980) Genotype × environment interactions and stability analysis for herbage yield of tall fescue synthetics. Crop Science. 20: 221-223.
13
14. Nguyen HT and Sleper DA (1983) Theory and application of half-sib mating in forage grass breeding. Theoretical and Applied Genetics. 64: 187-196.
14
15. Peters JP and Martinelli JA (1989) Hierarchical cluster analysis as a tool manages variation in germplsm collections. Theoretical and Applied Genetics. 78: 42-48.
15
16. Reif JC, Melchinger AE, Xia XC, Warburton M, Hoisington DA, Vasal SK, Srinivasan G, Bohn M and Frisch M (2003) Genetic distance on SSR and heterosis in tropical maize population. Crop Science. 43: 1275-1282.
16
17. SAS Institute (1988) SAS/STAT user’s guide. Release 6.03. SAS Institute, Cary
17
18. SharifiTehrani M, Mardi M, Sahebi J, Catalán P and Díaz-Pérez A (2009) Genetic diversity and structure among Iranian tall fescue populations based on genomic-SSR and EST-SSR marker analysis. Plant Systematic and Evolution. 282: 57-70.
18
19. Sleper DA and West CP (1996) Tall fescue In: Moser L E et al. (Eds.). Cool season forage grasses. Agron. Monogr. ASA. CSSA and SSSA. Madison. Pp. 471-502.
19
20. Veroesi F and Falcinelli M (1983) Evaluation of an Italian germplasm collection of Festuca arundinacea Schreb. through multivariate analysis, Euphytica. 38: 211-220.
20
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تحمل به تنش خشکی آخر فصل در ژنوتیپ های امیدبخش جو با استفاده از شاخص های حساسیت و تحمل به تنش
تحمل به خشکی 20 ژنوتیپ جو، در دو شرایط آبیاری معمولی و تنش با قطع آبیاری در زمان 50 درصد گلدهی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 3 تکرار در دشت ورامین ارزیابی شد. هدف این آزمایش شناسایی ژنوتیپهای امیدبخش جو متجمل به تنش خشکی است. در این مطالعه، تأثیرات خشکی بر روی 2 صفت عملکرد دانه و وزن خشک کل بوته با استفاده از برخی شاخصهای تحمل و حساسیت به تنش خشکی بررسی شد. شاخصهای مطالعهشده شامل: شاخص حساسیت به تنش (SSI)، میانگین تولید (MP)، تحمل (TOL)، تحمل به تنش (STI)، میانگین هندسی تولید (GMP)، میانگین هارمونیک تولید (HARM)، شاخص عملکرد (YI)، شاخص حساسیت به تنش (YSI) و شاخص پایداری عملکرد (YSI) بودند. شاخصها با استفاده از عملکرد دانه و وزن خشک کل بوته در شرایط عدم تنش (Yp) و تنش (Ys) محاسبه شدند. همبستگی مثبت و معناداری بین میانگین عملکرد دانه و وزن خشک کل بوته (در هر دو شرایط بدون تنش و تنش) با شاخصهای STI، YI، MP، HARM و GMP مشاهده شد. شاخصهای STI، MP، HARM، YI و GMP نسبت به شاخصهای SSI، YSI و TOL معیار گزینش بهتری را برای عملکرد دانه و وزن خشک کل بوته ارائه کردند. با استفاده از روش رتبهبندی براساس شاخصهای تحمل به تنش، ژنوتیپهای 2 و 5 بهمنزلۀ متحملترین و ژنوتیپ 1 بهمنزلۀ حساسترین ژنوتیپها نسبت به تنش خشکی شناخته شدند. لاینهای 9 و 8 با داشتن بیشترین عملکرد دانه، وزن خشک کل بوته و درنهایت عملکرد اقتصادی بالاتر، قابل توصیه برای کشت هستند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54527_65dc27ff9bd5bbd5f7fc9462e4a5d9c2.pdf
2015-03-21
39
55
جو
رتبهبندی
عملکرد دانه
شاخصهای خشکی
وزن خشک کل بوته
زهراسادات
طاهری پورفرد
zstaheri@ut.ac.ir
1
دانشجوی دکتری اصلاح نباتات، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت، ایران
AUTHOR
علی
ایزدی دربندی
aizady@ut.ac.ir
2
دانشیار، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران، پاکدشت، ایران
LEAD_AUTHOR
حبیب اله
قزوینی
habib_ghaz@yahoo.com
3
دانشیار، بخش غلات، مؤسسۀ تحقیقات و اصلاح نهال و بذر، کرج، ایران
AUTHOR
محسن
ابراهیمی
mebrahimi@ut.ac.ir
4
دانشیار، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران، پاکدشت، ایران
AUTHOR
سید محمد مهدی
مرتضویان
mortazavian@ut.ac.ir
5
استادیار، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران، پاکدشت، ایران
AUTHOR
1. بینام (1391) آمارنامۀ کشاورزی. وزارت جهادکشاورزی، معاونت برنامهریزی و اقتصادی مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات.
1
2. تجلی ح، موسوی س غ و آرزمجو ا (1391) «بررسی عملکرد و شاخصهای ارزیابی تنش در ژنوتیپهای پیشرفتۀ جو تحت تنش خشکی انتهای فصل». اکوفیزیولوژی گیاهان زراعی. 2(22): 171-184.
2
3. صفری س، دهقانی ح و چوگان ر (1388) «مطالعه شاخصهای تحمل به خشکی در لاینهای اینبرد ذرت در شرایط آبیاری محدود و کامل». حفاظت گیاهان (علوم و صنایع کشاورزی). 23 (2): 20-25.
3
4. Abdolshahi R, Omidi M, Talei AR and Yazdi Samadi B (2010) Evaluation of bread wheat genotypes for drought tolerance. International Journal of Clinical Practice. 3: 159-171.
4
5. Akar T, Avci M and Dusunceli F (2007) Barley: Post-harvest operations. FAO Annual Reports.
5
6. Aliakbari M, Moucheshi A, Hasheminasab H, Piraste AH, Taghi M and Emam Y (2013) Suitable stress indices for screening resistant wheat genotypes under water deficit conditions. Agronomy and Plant Production. 4(10): 2665-2672.
6
7. Amini R (2013) Drought stress tolerance of barley (Hordeum vulgare L.) affected by priming with PEG. IJFAS. 2(2): 803-808.
7
8. Anwar J, Subhani G, Hussain M, Ahmad J, Hussain M and Munir M (2011) Drought tolerance indices and their correlation with yield in exotic wheat genotypes. Pakistan Journal of Botany. 43(3): 1527-1530.
8
9. Blum A (2011) Drought resistance – is it really a complex trait. Functional Plant Biology. 38: 753-757.
9
10. Bouslama M and Schapaugh WT (1984) Stress tolerance in soybean. Part 1: evaluation of three screening techniques for heat and drought tolerance. Crop Science. 24: 933-937.
10
11. Breese ED (1996) The measurement and significant of genotype- environment interaction in grasses. Heredity. 21: 27-47.
11
12. Ceccarelli S, Grando S and Van Leur JAG (1987) Genetic diversity in barley landraces from Syria and Jordan. Euphytica. 36(2): 389-405.
12
13. Ceccarelli S, Grando S and Hamblin J (1992) Relationship between barley grain yield measured in low- and high-yielding environments. Euphytica. 64(1-2): 49-58.
13
14. Charmantier A and Garant D (2005) Environmental quality and evolutionary potential: Lessons from wild populations. Proceedings of the Royal Society. Biological Science. 727: 1415-1425.
14
15. Clark JM, DePauw RM and Townley-Smith TF (1992) Evaluation of methods for qualification of drought tolerance in wheat. Crop Science. 32: 423-428.
15
16. Dagnelie P (1975) Théorie et méthodes statistiques, applications agronomiques. Vol. 2, Les méthodes de l’inférence statistique. Les Presses Agronomiques de Gembloux. Gembloux. 463 p.
16
17. Farshadfar E, Jamshidi B and Aghaee M (2012) Biplot analysis of drought tolerance indicators inbreed wheat landraces of Iran. Crop Science. 4(5): 226-233.
17
18. Farshadfar E and Elyasi P (2012) Screening quantitative indicators of drought tolerance in bread wheat (Triticum aestivum L.) landraces. European Journal of Experiment Biology. 2(3): 577-584.
18
19. Fernandez GCJ (1992) Effective selection criteria for assessing stress tolerance. Proceedings of the international symposium on adaptation of vegetables and other food crops in temperature and water stress.
19
20. Fischer RA and Maurer R (1978) Drought resistance in spring wheat cultivars Part 1: Grain yield response. Aust. J. Agric. res. 29: 897-912.
20
21. Gan L, Wu X and Zhong Y (2015) Exogenously Applied Nitric Oxide Enhances the Drought Tolerance in Hulless Barley. Plant Prod Science. 18(1): 52-56.
21
22. Ganjeali A, Porsa H and Bagheri A (2011) Assessment of Iranian chickpea (Cicer arietinum L.) germplasms for drought tolerance. Agricultural water management. 98: 147-1484.
22
23. Golaabadi M, Arzani A and Mirmohammadi Maibody SAM (2006) Assessment of drought tolerance in segregating populations in durum wheat. Afr. Agric. J. Res. 1: 162-171.
23
24. Hall AE (1993) Is dehydration tolerance relevant to genotypic differences in leaf senescence and crop adaptation to dry environments? In: Close TJ and Bray EA (eds) Plant Responses to cellular dehydration during environmental stress. pp. 1-10.
24
25. Kaya Y, Plta C and Taner S (2002) Additive main effects and multiplicative interaction analysis of yield performance in bread wheat genotypes across environments. Turkish Journal of Agriculture. 26: 257-259.
25
26. Lin CS, Binns M R and Lefkovitch L P (1986) Stability analysis: where do we stand?. Crop Science. 26: 894-900.
26
27. Majidi M, Tavakoli V, Mirlohi A and Sabzalian MR (2011) wild safflower species (Carthamus oxyacanthus Bieb.): A possible source of drought tolerance for acid environments. Aust. J. Crop Science. 5(8): 1055-1063.
27
28. Mohammadi M, Karimizadeh R, and Abdipour M (2011) Evaluation of drought tolerance in bread wheat genotypes under dry land and supplemental irrigation conditions. AJCS. 5(4): 487-493.
28
29. Mollasadeghi V, Valizadeh M, Shahryari R and Imani A (2011) Evaluation of End Drought Tolerance of 12 Wheat Genotypes by Stress Indices. Middle-East Journal of Scientific Research. 7(2): 241-247.
29
30. Nazari L and Pakniyat H (2010) Assessment of Drought Tolerance in Barley Genotypes. Journal of Applied Science. 10(2): 151-156.
30
31. Ramirez P and Kelly JD (1998) Traits related to drought resistance in common bean. Euphytica. 99: 127-136.
31
32. Rosielle AA and Hamblin J (1981) Theoretical aspects of selection for yield in stress and non-stress environments. Crop Science. 21: 943-946.
32
33. Shirazi Kharazi MA and Nourirad MR (2011) Evaluation of sorghum genotypes under drought stress conditions using some stress tolerance indices. African journal of biotechnology. 10(61): 13086-13089.
33
34. Sing B D (2000) Plant breeding principles and methods. Kalyani publisher. 866 p.
34
35. Tababatabaei SA (2013) Study relationship of drought tolerance indices in wheat (Triticum aestivum) genotypes. International Journal of Biosciences. 3(7): 15-22.
35
36. Yarnia M, Arabifard N, Rahimzadeh Khoei F and Zandi P (2011) Evaluation of drought tolerance indices among some winter rapeseed cultivars. African Journal of Biotechnology 10(53): 10914-10922.
36
37. Yan W and Kang MS (2003) Biplot analysis: A graphical tool for breeders, geneticists and agronomist, CRC press, Boca Raton. FL. 313 p. 38. Zareii DF, Roozbahani A and Hosnamidi A (2014) Evaluation the effect of water stress and foliar application of nanoparticles on yield. Components and oil Percentage of Safflower (Carthamus Tinctorious L.). IJABBR Article. 4(2): 11-20.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیرات BAP، Kin و GA3 بر نوساقه زایی و تأثیرات IAA و زغال فعال بر ریشه زایی گیاه لیسیانتوس (Eustoma grandiflurom) در شرایط درونشیشه ای
گیاه لیسیانتوس، یکی از 10 گل شاخهبریدۀ برتر دنیا محسوب میشود. با توجه به محدودیتهای روشهای ازدیاد سنتی، کشت درونشیشهای برای تکثیر و تولید انبوه این گیاه مطلوب است. در این پژوهش بهمنظور بهینهسازی ازدیاد درونشیشهای این گیاه، آثار تنظیمکنندههای رشد بر نوساقهزایی و ریشهزایی نوساقههای تولیدشده از کشت ریزنمونههای گرهی بررسی شدند. در بررسی نوساقهزایی، تأثیر غلظتهای مختلف هورمونهای BAP و Kin با استفاده از محیط کشت پایۀ MS و بهصورت آزمایشهای جداگانه و در قالب طرح کاملاً تصادفی بررسی شدند. غلظت 5/0 میلیگرم در لیتر BAP با میانگین 4 نوساقه در هر ریزنمونه، بهترین تیمار بوده است. همچنین در این پژوهش اثر تلفیقی دو هورمون BAP و GA3 بر نوساقهزایی بهصورت آزمایش فاکتوریل و در قالب طرح کاملاً تصادفی بررسی شد. نتایج این آزمایش نشان داد که تیمار حاوی 2/0 میلیگرم در لیتر GA3 و 5/0 میلیگرم در لیتر BAP بهترین تیمار از نظر کیفیت و تعداد نوساقهها بود (17 نوساقه در هر ریزنمونه)، ضمن اینکه حضور GA3 سبب بهبود ارتفاع نوساقهها شد. نوساقههای تولیدشده در این تیمار، بهمنظور بررسی ریشهزایی، به محیط کشت MS حاوی غلظتهای متفاوتی از هورمون IAA (0، 2/0، 5/0 و 1 میلیگرم در لیتر) و زغال فعال (0 و 3 گرم در لیتر) منتقل شدند. محیط کشت MS حاوی 1 میلیگرم در لیتر از IAA و بدون زغال فعال با میانگین 75/2 ریشه در هر ریزنمونه، بهمنزلۀ بهترین تیمار برای ریشهزایی نوساقهها تعیین شد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54708_d0132d1e094596c3e180ef844640af6e.pdf
2015-03-21
57
67
پرآوری نوساقه
ریزازدیادی
ریشهزایی
لیسیانتوس (Eustoma grandiflurom)
روح اله
جعفری
jafari_roo@yahoo.com
1
کارشناس ارشد، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس
AUTHOR
احمد
معینی
moieni_a@modares.ac.ir
2
دانشیار، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس
LEAD_AUTHOR
قاسم
کریم زاده
karimzadeh_g@modares.ac.ir
3
دانشیار، گروه اصلاح نباتات و بیوتکنولوژی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس
AUTHOR
زهرا
موحدی
zahra_movahedi_312@yahoo.com
4
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ملایر
AUTHOR
1. خوشخوی م (1377) فنون کشت بافت گیاهی برای گیاهان باغبانی (ترجمه). انتشارات دانشگاه شیراز.
1
2. حاجنجاری ح (1373) ریز ازدیادی. انتشارات مؤسسۀ تحقیقات جنگلها و مراتع.
2
3. Cachita C and Craciun C (1990) Ultrastructural studies on some ornamentals. Ammirato, P. Evans, D. A. Sharp, WR. Bajaj, YPS. Handbook of plant cell culture. McGraw-Hill, New York. 5: 57-94.
3
4. Edwin FG, Hall MA and De Klerk GJ (2008) Plant Propagation by tissue culture. Springer, Dordrecht, The Netherlands, 479 pp.
4
5. Evans DA and Bravo JE(1995) Phenotypic and genotypic stability of tissue cultured plants. Zimmerman, RH. Tissue culture as plant production system for horticultural crops. Dordrecht, The Netherlands: Martinus Nijhoff. 7:73-94.
5
6. Hajime F, Matsubara C and Norihiro S (1990) Shoot regeneration from the roots of Prairie gentian (Eustoma grandiflorum). Plant Tissue Culture Letters. 7: 11-13.
6
7. Halevy AH and Kofranek AM (1984) Evaluation of lisianthus as a new flower crop. HortScience. 19: 845-847.
7
8. Hecht M, Ecker R, Ran S and Watad AA (1994) Differential expression in vitro of heterosis in lisianthus (Eustoma grandiflorum) at variousbenzyladenine and gibberellic acid levels. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant.30: 136-139.
8
9. Ichimura K and Korenaga M (1998) Improvement of vase life and petal color expression in several cultivars of cut Eustoma flowers using sucrose with 8-hydroxyquinoline sulfate. Bulletin of NationalResearchInstitute ofVegetables, Ornamental Plants & Tea, Japan. 13: 31-39.
9
10. Kee PY and Eun JH (2000) Cytokinins, auxins and actived charcoal affectes organogenesis and anatomical characteristics of shoot-tip cultures of lisianthus [Eustoma Grandiflorum (RAF.) Shinn] In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant. 36: 128-132.
10
11. Kunitake H, Nakashima T, Mori K, Tanaka M and Mii M (1995) Plant regeneration from mesophyll protoplast of lisianthus ( Eustoma grandiflorum ) by adding activated charcoal into protoplast culture medium Plant, Cell, Tissue and Organ. Culture 43: 59-65.
11
12. Roh SM and Lawson RH (1988) Tissue culture in the improvement of Eustoma. HortScience. 23: 658.
12
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه عملکرد و سایر صفات زراعی در ژنوتیپ های گندم دوروم در منطقۀ اصفهان
بهمنظور بررسی برخی صفات مهم گندم دوروم، 18 لاین به همراه 2 شاهد (گندم دوروم ’دنا‘ و گندم نان ’پارسی‘)، در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 3 تکرار و در مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان طی سالهای زراعی 1390ـ 1391 کشت و مقایسه شدند. نتایج تجزیۀ واریانس تفاوت معناداری برای صفات وزن هزاردانه، تاریخ رسیدن و تعداد روز تا ظهور 50 درصد سنبله، در بین ژنوتیپها نشان داد. تأثیرات سال و ژنوتیپ × سال برای عملکرد معنادار نشد که این امر نشاندهندۀ تشابه نسبی سالها و وجودنداشتن اثر متقابل ژنوتیپ در سال است. به عبارت دیگر، ژنوتیپها در سالهای مختلف مشابه عمل کردهاند. نتایج تجزیۀ خوشهای، لاینها را در 3 گروه عمده قرار داد که لاینهای گروه دوم عملکرد بالایی داشتند. لاین شمارۀ 6 (SOMAT_4/INTER_8//KUCUK) در صفتهای وزن هزاردانه و ارتفاع بوته بالاترین میانگینها را داشت. این لاین در تجزیۀ خوشهای در فاصلۀ زیادی نسبت به سایر لاینها قرار گرفت. با استفاده از روش تجزیه به عاملها مشخص شد، 2 عامل بیش از 67 درصد واریانس بین لاینها را توجیه کردند. صفتهای وزن هزاردانه و ارتفاع بوته مهمترین صفات در ایجاد تنوع بین لاینها بودند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54772_7a08e7ac41b27d7c3f37256121fc6d9f.pdf
2015-03-21
69
77
تجزیۀ خوشه ای
تجزیۀ عاملی
ژنوتیپ × سال
صفات کمّی
عملکرد دانه
سمیرا
آقایی
samiraaghaii22@yahoo.com
1
کارشناسی ارشد، گروه زراعت، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران
LEAD_AUTHOR
عنایت اله
توحیدی نژاد
2
استادیار، گروه زراعت، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران
AUTHOR
مهدی
نصراصفهانی
3
دانشیار، بخش گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
1. آذرمگین س، کاظمی اربط ح و زینلی ح (1389) «تنوع صفات فنولوژیکی و مورفولوژیک در برخی از لاینهای امیدبخش گندم». علوم کشاورزی. 13(4): 28ـ 36.
1
2. پژومند م (1379) بررسی ارقام گندم در آزمایشات مقایسۀ عملکرد در ایستگاه زرقان. گزارش نهایی تحقیقات غلات. سازمان تحقیقات آموزش و کشاروزی شیراز، ایران. ص 69.
2
3. حاجی محمدعلی جهرمی م، خدارحمی م، محمدی ع و صادق قول مقدم ر (1389) «تجزیه و تحلیل انعطافپذیری فنوتیپی ژنوتیپهای امیدبخش گندم دوروم در اقلیم گرم و خشک جنوب ایران». زراعت و اصلاح نباتات. 6(3): 61ـ 70.
3
4. قنبری ا، شمسپور ش، فرامرزی ع و فربودی م (1388) «ارزیابی عملکرد لاینهای پیشرفتۀ گندم دوروم و گندم نان دیم در منطقۀ کندوان شهرستان میانه». دانش نوین کشاورزی. 14(5): 37ـ 46.
4
5. قندی ا، صادقی د و درچهای م ع (1383) طرح بررسی ژنوتیپهای امیدبخش گندم در آزمایشات مناطق معتدل کشور. طرح گزارش پژوهشی، بخش تحقیقات غلات، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، اصفهان، ایران، 65 ص.
5
6. محمدی ع، مجیدی ا، بیهمتا م و حیدری شریفآباد ح (1385) «ارزیابی تنش خشکی بر روی خصوصیات زراعی و مورفولوژیک در تعدادی از ارقام گندم». پژوهشوسازندگیدرزراعتوباغبانی. 73: 84ـ 192.
6
7. نقدیپور آ، خدارحمی م، پورشهبازی ع و اسماعیلزاده م (1390) «تجزیه به عاملها برای عملکرد دانه و سایر خصوصیات گندم دوروم». زراعتواصلاحنباتات. 7(1): 84ـ 96.
7
8. یزدی صمدی ب و عبدمیشانی س (1370) اصلاحنباتاتزراعی. مرکز نشر دانشگاهی. ص 298.
8
9. Almansouri M, Kinet JM and Lutts S (2001) Effect of salt and osmotic stresses on germination in durum wheat (Triticum durum Desf.). Plant and Soil. 231(2): 243-254.
9
10. Cooper JC B (1983) Factor analysis. An overview. American Statistical. 37: 141-147.
10
11. Fabrigar LR, Wegener DT, MacCallum RC and Strahan EJ (1999) Evaluating the use of exploratory factor analysis in psychological research. Psychological Methods. 4: 272-299.
11
12. Reeves TG, Rajaram S, Ginkel MV, Trethowan R, Braun HJ and Cassaday K (1999) New Wheats for a Secure, Sustainable Future. Mexico D. F., CIMMYT.
12
13. Richards RA (1996) Defining selection criteria improve yield under drought. Plant Growth Regulation. 20: 157-166.
13
14. Van Beuningen LT and Busch RH (1997) Genetic diversity among North American spring wheat cultivars: I., Analysis of the coefficient of parentage matrix. Crop Science. 37: 570-579.
14
15. Aghaee SarbazeMand Amini A (2011) Genetic variability for agronomy traits in bread wheat genotype collection of Iran. Seed and Plant. 27: 581-599.
15
16. Bartlett MS (1937) Properties of sufficiency and statistical tests. Proceedings of the Royal Society of London. Series A, Mathematical and Physical Sciences. Pp. 268-282.
16
17. Mardia KV, Kent JT and Bibby JM (1979) Multivariate analysis. Academic press.
17
18. Lawley DN and Maxwell AE (1971) Factor analysis as a statistical method.
18
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تحمل به تنش شوری اکوتیپهای مختلف رازیانه (Foeniculum vulgare Mill.)
برای بررسی آثار شوری بر جوانهزنی رازیانه[1]، آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح پایۀ کاملاً تصادفی با 3 تکرار و 2 فاکتور A شامل 10 اکوتیپ سردشت، سقز، کرمان، تبریز، سبزوار، روم، خوسف، بجنورد، مشهد و شبستر و B، 5 سطح شوری 1، 3، 5، 7 و 9 دسیزیمنس بر متر کلریدسدیم، در آزمایشگاه تحقیقاتی دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه بیرجند در سال 1393 اجرا شد. صفات مدنظر شامل طول، وزن تر و خشک ریشهچه، ساقهچه و گیاهچه، طول ریشهچه/ ساقهچه، شاخص بنیۀ بذر، درصد و سرعت جوانهزنی بود. براساس تجزیۀ واریانس، اکوتیپها در بیشتر صفات بهجز وزن تر گیاهچه، وزن خشک ریشهچه و سرعت جوانهزنی در سطح 1 درصد اختلاف معنادار داشتند. در مقایسۀ میانگین اکوتیپها، کرمان با طول ریشهچه، ساقهچه و گیاهچه، شاخص بنیۀ بذر، سرعت و درصد جوانهزنی نسبتاً بالاتر، متحملترین اکوتیپ به شوری بود. در مقایسۀ میانگین سطوح شوری، بین سطوح در بیشتر صفات جز وزن خشک ریشهچه تفاوت معناداری وجود داشت. تجزیۀ خوشهای اکوتیپها، آنها را در دو خوشۀ مجزا گروهبندی کرد. [1]. Foeniculum vulgare
https://jacb.ut.ac.ir/article_54613_183629d9586d98fe329fc8bf2d63685c.pdf
2015-03-21
79
94
جوانهزنی
دارویی
غلظت
کلریدسدیم
گیاهچه
عصمت
خاکسارنژاد
e.khaksarnejad@gmail.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد اصلاح نباتات، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران
AUTHOR
محمد
ضابط
mzabet@birjand.ac.ir
2
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران
AUTHOR
علی
ایزانلو
aizanir@yahoo.com
3
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران
AUTHOR
محمد
حسن سیاری
msayari@birjand.ac.ir
4
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران
AUTHOR
امیری م. ب.، قربانی ر. جهان م. و احیایی ح. ر (1390) «ارزیابی برخی خصوصیات جوانهزنی و سبزشدن بذور رازیانه (Foeniculum vulgare Mill.) تولیدشده تحت شرایط استفاده از کودهای بیولوژیک و آلی در مزرعه». نشریه پژوهشهای سراسری ایران. 10:(4): 649ـ 658.
1
امید بیگی ر (1376)؛ رهیافتهایتولیدوفرآوریگیاهان دارویی، جلد دوم. انتشارات طراحان نشر، 424 صفحه.
2
دوازدهامامی س (1381) «اثر تنش شوری بر خصوصیات جوانهزنی بذر 10 گونۀ گیاه دارویی». چکیدۀ مقالات هفتمین کنگره علوم زراعت واصلاح نباتات ایران. مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر کرج. نشر آموزش کشاورزی. 571ـ 572.
3
راعی م. زینلی ح. و علیزاده ا (1393). «بررسی تنوع سیتوژنتیکی در جمعیتهای شوید (Anethum graveolens L.)». ژنتیکنوین. 189-198 :2
4
سلامتی م. و زینلی ح (1391)K بررسی تنوع ژنتیکی برخی از ژنوتیپهای سیاه دانه (Nigella sativa L.) با استفاده از صفات مورفولوژیکی و زراعی». فصلنامة علمی-پژوهشی تحقیقاتگیاهانداروییومعطرایران. 29(1): 201ـ 214.
5
شریفی عاشورآبادی ا. محبی ح. ر.، ملکی ج. و منعم ر (1386) «بررسی تأثیر شوری بر جوانهزنی تودۀ محلی و رقم اصلاحشدۀ گیاه دارویی رازیانه (Foeniculum vulgare Mill.) در شرایط مختلف محیطی». گیاه و زیستبوم. 10: 71ـ 85.
6
صفائی ل. افیونی د. و زینلی ح (1392) «بررسی روابط همبستگی و تجزیه به مؤلفههای اصلی اسانس و ترکیبهای متشکلۀ اسانس در12 ژنوتیپ رازیانه (..(Foeniculum vulgare Mill» فصلنامة علمی-پژوهشی تحقیقاتگیاهانداروییومعطرایران. (1): 187ـ 200.
7
صفائی ل. جابرالانصار ز. و زینلی ح (1391) «تجزیه و تحلیل خصوصیات سیتوژنتیک در گیاه دارویی رازیانه». نشریه علوم دانشگاه تربیت معلم. 11(1): 45ـ 56
8
صفائی ل. زینلی ح. و افیونی د (1390) «بررسی تنوع ژنتیکی صفات زراعی در ژنوتیپهای مختلف رازیانه.(Foeniculum vulgare Mill.) »دو فصلنامة علمی-پژوهشی تحقیقاتژنتیکواصلاحگیاهانمرتعیوجنگلیایران. 19(1): 167ـ 180.
9
صفرنژاد ع. و حمیدی ح (1387) «بررسی ویژگیهای مورفولوژی رازیانه (Foeniculum vulgare Mill.) تحت تنش شوری». دوفصلنامة علمی-پژوهشی تحقیقاتژنتیکواصلاحگیاهانمرتعیوجنگلیایران. (1)16: 125ـ 140.
10
عبدلزاده ا. و صفاری ن (1381) «بررسی اثرات شوری بر رشد رویشی در 11 رقم و لاین گندم با تکیه بر انباشتگی یونها». مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. 2: 95ـ 103.
11
عرب ف (1385) «بررسی اثر تنش شوری بر جوانهزنی و رشد چند گونۀ مرتعی در شرایط آزمایشگاه و گلخانه». دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران. گروه احیای مناطق خشک و کوهستانی. پایاننامۀ کارشناسی ارشد.
12
موحدی م. ع.، فرهنگیان کاشانی س. منعم ر. رحیملی م. ادیبدوگاهه م. و مولازاده ص (1391) «بررسی اثر تنش شوری بر جوانهزنی و رشد اولیۀ 5 گیاه دارویی گل راعی، رازیانه، بابونه، زیرۀ سبز و بومادران». فصلنامه علمی– پژوهشی گیاه و زیستبوم. ویژهنامه گیاهان دارویی.33: 3ـ 15.
13
میرحیدر ح (1373) معارف گیاهی (کاربرد گیاهان در پیشگیری درمان بیماریها). انتشارات دفتر نشر فرهنگ اسلامی تهران. 535 ص.
14
میرزائی س. رحیمی ا. دشتی ح. سیادت ع. و مرادی ک (1389) «اثر اصلاحی کلسیم و پتاسیم بر خصوصیات مورفولوژیک گیاه دارویی زنیان تحت تنش شوری». یازدهمین کنگرۀ علوم زراعت و اصلاح نباتات ایران. 4062ـ 4065.
15
میرمحمدیمیبدی ع. م.، و قرهیاضی ب (1389) جنبههای فیزیولوژیک و بهنژادی تنش شوری گیاهان. مرکز نشر دانشگاه صنعتی اصفهان. 274 صفحه.
16
Abdul-baki AA and Anderson JD (1970) Viability and leaching of sugars from germinating barley. Crop science. 10: 31-34.
17
Ahmadi H (2002). Applied Geomorphology, Desert-Wind Erosion. Tehran University Press, Iran. 2: 570.
18
Akbari Nia A (2010) Effect of salt stress on germination and seedling growth of Nepeta pogonosperma Jamzad and Assadi. The proc. 11th Iran. Crop Science Cong. Vol. 1: Crop Production. Shahid Beheshti University, Tehran, Iran, 24-26 July.
19
Ashraf M and Akhtar N (2004) Influence of salt stress on growth, ion accumulation and seed oil content in sweet fennel. Biologia Plantarum. 48(3): 461-464.
20
Bajji M, Kinet JM and Lutts S (2002) Osmotic and ionic effects of NaCl on germination, early seedling growth, and ion content of Atriplex halimus (Chenopodiaceae). Canadian Journal of Botany. 80, 297-304.
21
Fateh A and Alimahammadi R (2010) Study of drought and salinity stress on germination of common thymus. The proc. 11 Th Iran. Crop Science Cong. Vol 1: Crop Production. Shahid Beheshti University, Tehran, Iran, 24-26 July.
22
Greenvay H and Munns R (1980) Mechanism of salt tolerance of nonhalophytes. Annual Review of Plant Physiology. 31: 149-190.
23
Helms TC, Deckard EL, and Gregorie PA (1997). Corn, Sunflower and soybean emergence influenced by soil temperature and soil water content. Agron Journal. 89: 59-63.
24
Kerepesi I, and Galiba G (2000). Osmotic and Salt Stress-Induced Alteration in Soluble Carbohydrate Content in Wheat Seedlings. Crop Science, 40: 482-487.
25
Khodarahmpour Z (2011) Screening maize (Zea mays L.) hybrids for salt stress tolerance at germination stage. African Journal of Biotechnology. 10 (71): 15959-15965.
26
Lacan D and Durand M (1996) Na+-K+ exchange at the xylem/symplast boundary. Plant physiology. 110: 705-711.
27
Lamsal K, Guna N and Ting IP (1990) Salinity effects on germination and mobilization of reserves in jojoba seed. Crop Science. 30: 704-708.
28
Maguire JD (1962) Speed of germination-aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigur. Crop Science. 2: 176-177.
29
Marschner H (1986) Mineral nutrition of higher plants. Academic press, London, 674 p.
30
Mensuh JK, Akomeah PA, Ikhajiagbe B and Ekpekurede EO (2006) Effects of salinity on germination, growth and yield of five groundnut genotypes. African Journal of Biotechnology. 5 (20): 1973-1979.
31
Mostafavi K (2011) An Evaluation of Safflower Genotypes (Carthamus tinctorius L.), Seed Germination and Seedling Characters in salt Stress. Conditions. African Journal of Agricultural Research. 6(7): 1667-1672.
32
Munns R, Greenway H, Delane R, and Gibbs J (1982). Ion concentration and carbohydrate status of the elongating leaf tissue of Hordeum vulgare growing at high extrnal NaCl. J. Exp Bot., 33: 574-583.
33
Niu X, Bressan RA, Hasegawa PM, and Pardo JM (1995). Ion homeostasis in NaCl stress environment. Plant Physiology. 109: 735-742.
34
Penuelas J, Isla R, Filella I, and Araus JL (1997). Visible and neart-infrared reflectance assessment of salinity effects on barely. Crop Science. 37: 198-202.
35
Pujol JA, Calvo JF and Diza LR (2000) Recovery of germination from different osmotic conditions by four halophytes from southeastern Spain. Annals of Botany. 85: 279-286.
36
Qasim M, Ashraf M, Ashraf MY, Rehman SU and Rha ES (2003) Salt-induced changes in two canola cultivars differing in salt tolerance. Biologia Plantarum. 46 (4): 629-632.
37
Rahimi A (2010) Effects of NaCl priming and salinity levels on germination traits in cumin. The proc. 11th Iran. Crop. Sci. Cong. Vol. 1: Crop Production. Shahid Beheshti University, Tehran, Iran, 24-26 July.
38
Rajabi R and Postini K (2005) Effects of NaCl on thirty cultivars of bread wheat seed germination. Agriculture Science Journal. 27(1): 29-45.
39
Rehman S, Harris PJC, and Bourne WF (1999). Effect of artificial ageing on the germination, ion leakage and salinity tolerance of Acacia tortilis and A. coriacea seeds. Seed Science. 27: 141-149.
40
Rubio-Casal AE, Castillo JM, Luque CJ and Figueroa ME (2003) Influence of salinity on germination and seeds viability of two priming colonizers of Mediterranean salt pans. Journal of Arid Environments. 53: 145-154.
41
Shalhevet J (1993). Plant under salt and water stress. In: Plant adaptation to environmental stress (Eds: L. Fowden, T. Mansfield and J. Stoddard). Chapman and Hall, 133-1554.
42
Shannon MC (1986) Breeding, selection and the genetics of salt tolerance. In: Salinity tolerance in Plants. (Eds: Staples RC and Toenniessn GH). John Wiley and Sons. 231-252.
43
Singh L and Pal B (2001) Effect for saline water and ferility levels on yield, potassium, zinc content and uptake by blonde psyllium (Plantago ovata Forsk.). Crops Research. (Hisar). 22: 424-431.
44
Singh R, and Haragava GP (1995). Response of safflower and dill to soil salinity. Indian Journal of Agricultural Science. 65(6): 442 -444.
45
Suhdyda CG, Redman RE, Harvey BL and Cypywnyk AL (1999) Comparative response. Cultivated and wild barley species to salinity stress and calcium supply. Crop Science. 32: 154-163.
46
Szabolcs I (1994). Soils and salinization. P: 3-11, In: M. Pessarakli (ed.), Handbook of plant and crop stress. Marcel Dekker, New York.
47
Werner JE, and Finkelstein RR (1995) Arabidopsis mutant with reduced response to NaCl and osmotic stress. Physiologia Plantarum. 93: 659-666.
48
Zhua Z, Lianga Z, Hana R and Wang X (2009) Impact of fertilization on drought response in the medicinal herb Bupleurum chinense DC. Growth and saikosaponin production. Industrial Crops and Products. 29(2-3): 629-633.
49
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین آللهای S خودناسازگاری و روابط بین آنها در نتاج F1 حاصل از تلاقی دو رقم فندق (Corylus avellana L.)
خودناسازگاری فندق (Corylus avellana L.) از نوع اسپوروفیتیک است که توسط یک مکان ژنی S با چندین آلل کنترل میشود. سازگاری دانة گرده با کلالۀ فندق در برنامههای اصلاحی برای انتخاب والدین و همچنین در گزینش ارقام گردهدهنده در باغهای تجاری، ضروری است. هدف این آزمایش بررسی و تعیین روابط سازگاری گردهـ کلاله و تعیین آللهای S در 24 نتاج حاصل از تلاقی دو رقم فندق ’تیجیال‘ و ’کاسفورد‘ توسط میکروسکوپ فلورسنس بود. 4 آزمایشگر دانة گرده برای هر یک از 4 آلل مطالعهشده S2، S3، S7 وS11 انتخاب شدند. شاتونهای نر آنها در مرحلۀ نزدیک به شکوفایی، جمعآوری و خشک شدند. زمانی که بساکها شکفتند، دانههای گرده جمعآوری و در دمای 20- درجۀ سانتیگراد نگهداری شدند. در هر درخت دانهالی، دو شاخه اخته و سپس گلهای مادۀ آنها پوشانده شدند. خوشههای گل ماده زمانی که خامهها به اندازۀ 2 تا 6 میلیمتر رشد کرده بودند، از شاخهها برداشت شدند. 5 گل ماده (خوشه) از هر نتاج با دانههای گردة هر یک از ارقام آزمایشگر گردهافشانی شدند. حدود 20 تا 24 ساعت بعد از گردهافشانی، خامههای کلالهدار از جوانهها جدا و در محلول آنیلین بلوـ دای له شدند و سپس توسط میکروسکوپ فلورسنس با بزرگنمایی x40 و x100 مطالعه شدند. در این پژوهش، آللهای 22 نتاج بهطور کامل مشخص شد و در 2 نتاج دیگر فقط یک آلل s شناسایی شد. در گردهافشانیهای سازگار، دانههای گرده بهخوبی جوانه زدند، لولههای گرده از سطح کلاله نفوذ کرده و تودهای از لولههای گردة موازی تولید کردند. درحالیکه در واکنشهای ناسازگار، دانههای گرده اغلب کمتر جوانه زدند و در صورت جوانهزنی، لولههای گردۀ کوتاهی تولید کردند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54541_185c7084c803ee39182fc90e55de4473.pdf
2015-03-21
95
105
اسپوروفیتیک
دورگه
گردهافشانی
میکروسکوپ فلورسنس
علی رضا
قنبری
ghanbari66@yahoo.com
1
استادیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
علی رضا
طلایی
atalaii@ut.ac.ir
2
استاد گروه علوم باغبانی،دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران،کرج، ایران
AUTHOR
جووانی
می
me@agraria.unito.it
3
استاد گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تورینو، تورینو، ایتالیا
AUTHOR
1-Bassil NV and Azarenko AN (2001) RAPD markers for self-incompatibility in Corylus avellana L. Acta Horticulturae. 556: 537-543.
1
2- Beyhan N and Odabas F (1997) The investigation of compatibility relationships of some hazelnut cultivars. Acta Horticulturae. 445: 173-177.
2
3- Erdogan V and Mehlenbacher SA (2001) Incompatibility in wild Corylus species. Acta Horticulturae. 556: 163-169.
3
4- Franklin FCH, Lawrence MJ and Franklin Tong VE (1995) Cell and molecular biology of incompatibility in flowering plants.International Review of Cytology. 158: 1- 64.
4
5- Hampson CR, Azarenko AN and Soeldner A (1993) Pollen-stigma intractions following compatible and incompatible pollinations in hazelnut. Journal of American Society of Horticultural Science.118: 814-819.
5
6- Heslop-Harrison Y, Heslop-Harrison JS and Heslop-Harrison J (1986) Germination of Corylus avellana L. (hazel) pollen: hydration and the function of oncus. Acta Botnica Neerlandica. 35: 265-284.
6
7- Lagerstedt HB (1975) Filberts. In: Janick J and Moore JN (eds.) Advances in fruit breeding. Purdue University press, West Lafayette, Ind., Pp 456-489.
7
8- Matton DP, Nass N, Clarke AE and Newbegin E (1994) Self-incompatibility: how plants avoid illegitimate offspring. Proceeding National Academy of Science. USA. 91: 1992-1997.
8
9- Me G and Radicati L (1983) Studies on pollen incompatibility in some filbert (Corylus avellan L.) cv.s and selections. In pollen biology and implications for plant breeding. Mulcahy and Ottaviano Eds. Elsevier Biomedical, New York, Amesterdam, Oxford. Pp: 237-242.
9
10- Me G, Radicati L, Vallania R, Miaja ML, Valentini N and Pancheri G (2000) Research on the genetics of incompatibility in Corylus. Acta Horticulturae. 538: 477-481.
10
11- Mehlenbacher SA (1997a) Testing compatibility of hazelnut crosses using fluorescence microscopy.Acta Horticulturae. 445: 167-171.
11
12- Mehlenbacher SA and Thompson MM (1988) Dominance relationships among S-alleles in Corylus avellana L. Theoretical Applied Genetics. 76: 669-672.
12
13 - Mehlenbacher SA (1991) Hazelnuts. In: Moore JN and Ballington JR (Eds). Genetic resources in temperate furit and nut crops.Acta Horticulturae. 290: 789-836.
13
14- Mehlenbacher SA (1997b) Revised dominance hierarchy for S-alleles in Corylus avellana L.Theoretical Applied Genetics. 94:360-366.
14
15- Smith DC and Mehlenbacher SA (1994) Use of Tyvek housewarp for pollination bags in breeding hazelnut (Corylus avellana L.). Hortscience. 29: 918.
15
16- Thompson MM (1979a) Genetics of incompatibility in Corylus avellana L. Theoretical Applied Genetics. 54: 113-116.
16
17- Thompson MM (1979b) Incompatibility alleles in Corylus avellana L. cultivars. Theoretical Applied Genetics. 55:29-33.
17
18- Thompson MM, Lagerstedt HB and Mehlenbacher SA (1996) Hazelnut. In: Janick Jand Moore JN.(eds.). Fruit Breeding, Vol.3: Nuts John Wiley & Sons, New York, P: 125-184.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی توده های بومی کدوی شمال غرب ایران از نظر صفات مورفولوژیکی و فیزیولوژیکی
بهمنظور مطالعۀ تنوع ژنتیکی تودههای بومی کدوی شمال غرب ایران از نظر صفات مورفولوژیکی و فیزیولوژیکی، 18 تودۀ کدو متعلق به گروههای آجیلی، تنبل و زینتی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در 3 تکرار، در مرکز تحقیقات کشاورزی ارومیه در سال 1392 ارزیابی شدند. ویژگیهای مورفولوژیکی مربوط به میوه، بذر، برگ، و گل و ویژگیهای فیزیولوژیکی ازقبیل فتوسنتز، TSS و اسیدیتۀ ژنوتیپها بررسی شد. بالاترین ضریب تنوع ژنتیکی برای عملکرد میوه و طول بوته مشاهده شد. بیشتر ویژگیهای بررسیشده توارثپذیری متوسط و بالا داشتند. برای ویژگیهایی ازقبیل وزن میوه، عملکرد میوه و بذر و طول میوه بهترتیب بیشترین بازده ژنتیکی مورد انتظار و برای صفاتی ازقبیل شاخهدهی اولیه، طول برگ، نسبت طول به عرض برگ، قطر میلۀ پرچم و قطر و طول بساک کمترین بازده ژنتیکی مورد انتظار مشاهده شد. براساس نتایج تجزیه به مؤلفههای اصلی، 7 مؤلفۀ اصلی درمجموع 95/86 درصد از تغییرات کل را توجیه کردند. در مؤلفۀ اول، اهمیت و سهم صفات وزن میوه، عرض میوه، طول میانگره، شاخهدهی اولیه، عملکرد میوه، وزن بذر و صددانه، TSS، اسیدیته، طول میوه و دم میوه، طول دمگل، طول کاسبرگ نر و ماده، ضخامت پوست، نسبت وزن میوه به دانه و فتوسنتز خالص بیشتر بود. نتایج تجزیۀ کلاستر نشان داد که بیشترین فاصلۀ ژنتیکی در کدوی آجیلی بین تودۀ کناربراژ و ساعتلو، در کدو تنبل میان تودۀ زایهکندی و خوی به دست آمد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54776_8e7ef2b74cea8a1fa7a7f944b7692550.pdf
2015-03-21
107
123
تنوع ژنتیکی
کدو
کلاستر
وراثت پذیری
داود
مردان زاده
davoud2084@yahoo.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه تولیدات گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران
LEAD_AUTHOR
بهمن
زاهدی
zahedi2000@yahoo.com
2
استادیار، گروه تولیدات گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران
AUTHOR
رضا
درویش زاده
darvish_r2001@yahoo.com
3
دانشیار، گروه اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
1. امیری اوغان ح، مقدم م، احمدی م ر، ولیزاده م و شکیبا م ر (1381) «وراثتپذیری عملکرد دانه و اجزای عملکرد کلزا در شرایط عادی و تنش خشکی». نهال و بذر. 18(2): 179ـ 199.
1
2. برزگر ر (1392) بررسی تنوع ژنتیکی نمونههایی از گونههای کدوی ایران با استفاده از خصوصیات مرفولوژیکی، مولکولی و بیوشیمیایی. دانشگاه گیلان. رشت. رسالۀ دکتری.
2
3. بینام (1390) آمارنامه کشاورزی. دفتر آمار و فناوری اطلاعات، معاونت برنامهریزی و اقتصادی، وزارت جهاد کشاورزی.
3
4. جعفری ع م، نصرتی ح و حیدری ش (1382) «بررسی عملکرد علوفه، صفات مرفولوژیکی و صفات کیفی در 18 رقم و اکوتیپ یونجه زراعی Medicago sativa در دوشرایط مطلوب و تنش خشکی.» تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران. انتشارات مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع، 11: 63-103.
4
5. حسینی پ (1386) بررسی فیزیولوژیکی اثر تنش سرما در مرحلۀ گیاهچهای ژنوتیپهای مختلف برنج. دانشگاه شهید چمران اهواز. اهواز. رساله دکتری.
5
6. دشتی ف، کاشی ع و وزوائی ع (1382) «بررسی تنوع ژنتیکی در بین تودههای ترۀ ایرانی (Allium ampeloprasum sspp. Persicum) با استفاده از صفات مرفولوژیکی». نهال و بذر. 19(1): 87-100.
6
7. راحمی م (1389) فیزیولوژی پس از برداشت. مرکز نشر دانشگاه شیراز، شیراز، 437 ص.
7
8. زرگری ع (1383) گیاهان دارویی. جلد دوم، موسسه انتشارات و چاپ. تهران،930ص.
8
9. شیخ ف و بزی ح (1391) «بررسی تنوع تودههای بومی کدو آجیلی در استان گلستان». همایش ملی فرآوردههای طبیعی و گیاهان دارویی بجنورد، دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی.
9
10. نارویی م ر، اله دو م، قاسمی آ و فنایی ح ر (1388) «بررسی تنوع ژنتیکی و توارثپذیری عمومی تودههای محلی هندوانه سیستان». علوم باغبانی. 3(40): 95ـ 103.
10
11. Anders TC (2000) An overview of the oil pumpkin. Cucurbita Genet Coop Rep. 23: 87-88.
11
12. Balkaya A, Ozbakir M and Sait Kurtar E (2010) The phenotypic diversity and fruit characterization of winter squash (Cucurbita maxima) populations from the Black Sea Region of Turkey. African Journal of Biotechnology. 9: 152-162.
12
13. Barboza NF, Albertazzi J, Sibaja JA, Mora F, Astorga C and Ramírez P (2012) Analysis of genetic diversity of Cucurbita moschata (D.) germplasm accessions from Mesoamerica revealed by PCR SSCP and chloroplast sequence data. Scientia Horticulturae. 134: 60-71.
13
14. FAO-Food and Agriculture Organization (2012) Statistic Database [Online]. Available at http://www.factfish.com/statistic/pumpkins.
14
15. Ferriol M, Pico B and Nuez F (2003) Genetic diversity of a germplasm collection of Cucurbita pepousing SRAP and AFLP markers. Theor Appl Genet. 107: 271-282.
15
16. Girorgio J, Leo L, Zacheo G and Lamasces N (2007) Evaluation of 52 almond (Prunus Amygdalus Batch) cultivars from the Apulia region in Southern Italy. Science and Biotecknology. 82: 541-546.
16
17. Grisales SO, García DB And Vallejo Cabrera FA (2009) Effect of inbreeding on the quality traits of squash fruit. Acta Agronómica. 58-3.
17
18. Jiang Y and Huang N (2001) Drought and heat stress injury to two cool-season turfgrasses in relation to antioxidant metabolism and lipid peroxidation. Crop Sciience. 41: 436-442.
18
19. Klamkowsky K and Ttreder W (2006) Morphological and physiological response of strawberry plants to water stress. Agriculturai conspectus scientificus. 71: 159-165.
19
20. Pistorale SM, Abbott LA and Adriana A (2008) Genetic diversity and broad sense heritability in tall wheatgrass (Thinopyrum ponticum). Ciencia e Investigación Agraria. 35: 213-218.
20
21. Stansfield WD (1991) Theory and Problems in Genetics. Mc Graw-Hill, New York. pp. 107-111.
21
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تنوع مورفولوژیکی و میزان اسانس اکوتیپهای مختلف گونههای سالویا در جنوب غرب ایران
این پژوهش بهمنظور ارزیابی تنوع و تعیین روابط بین گونههای سالویا شامل S. syriaca(5 اکوتیپ)، S. virgate (8 اکوتیپ)، S. reuterana (6 اکوتیپ)و S.multicaulis(6 اکوتیپ) در جنوب غرب ایران با توجه به صفات ریختشناسی و میزان اسانس، در دانشگاه شهرکرد در سال 1393 انجام گرفت. بیشترین میزان اسانس در گونۀ S. multicaulis از اکوتیپهای M2، M1 و M3 بهدست آمد. همچنین اکوتیپ R3 در بین اکوتیپهای گونۀ S. reuterana،اکوتیپهای S5، S3 و S4از گونۀ S. syriaca و اکوتیپهای V1 و V8 متعلق به گونۀ S. virgate بالاترین میزان اسانس را داشتند. براساس نتایج تجزیۀ خوشهای اکوتیپها، گونهها به 4 گروه تقسیم شدند. اکوتیپهای گونۀ S. multicaulisدر یک دستۀ جداگانه و اکوتیپهای گونههای S. syriaca، S. virgate و S. reuterana بهطور پراکنده در 3 گروه دیگر قرار گرفتند. نتایج همبستگی همۀ صفات در 4 گونۀ مطالعهشده نشان داد که میزان اسانس در گونههای مطالعهشده با صفات ارتفاع گیاه، طول برگ و طول گلبرگ همبستگی منفی معنادار و با صفات طول و قطر نهنج همبستگی مثبت معنادار داشت. بنابراین، اکوتیپهای با نهنجهای بزرگ و اسانس زیاد، برای اصلاح و اهلیسازی این گونهها مناسباند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_54546_3529266611faf3870558a2baed5dd73a.pdf
2015-03-21
125
135
اسانس
تنوع
مریم گلی
مورفولوژی
نعناعیان
بهناز
سعادتجو
b.saadatjou@gmail.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
AUTHOR
عبدالرحمان
محمدخانی
mkhani7@yahoo.com
2
دانشیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
LEAD_AUTHOR
کرامت الله
سعیدی
saeidi@agr.sku.ac.ir
3
استادیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
AUTHOR
حمزه علی
شیرمردی
shirmardi1355@gmail.com
4
کارشناس ارشد، بخش منابع طبیعی، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان چهارمحال بختیاری، شهرکرد، ایران
AUTHOR
1. امیدبیگی ر (1384) تولید و فرآوری گیاهان دارویی. جلد اول. به نشر. 347 ص.
1
2. امیری ح (1390) «شناسایی مواد تشکیلدهنده و بررسی اثرات آنتیاکسیدانی اسانس و عصارۀ متانولی گیاه Salvia multicaulis Vahl». گیاهان دارویی. 11(8): 111-117.
2
3. جمزاد ز (1391) فلور ایران (تیره نعناعیان). مؤسسۀ تحقیقات جنگلها و مراتع کشور. تهران. 1074 ص.
3
4. سفیدکن ف (1387) «بررسی مقایسهای ترکیبهای موجود در اسانس دو گونۀ مریم گلی Salvia virgate و Salvia syriaca». تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. 4: 83-102.
4
5. فتاحی ب، ناظری و و کلانتری س (1393) «ارزیابی اکوتیپهای مختلف گونۀ مریم گلی اصفهانی(Salvia reuterana) در ایران». تولید و فرآوری محصولات زراعی و باغی. 4(11): 133-148.
5
6. مظفریان و (1376) فرهنگ نامهای گیاهان ایران. فرهنگ مصور. تهران. 740 ص.
6
7. یوسفی م، ناظری و و میرزا م (1392) «بررسی برخی ویژگیهای اکولوژیک، مورفولوژیک و میزان اسانس گیاه نوروزک (Salvia leriifolia Benth)». تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. 29(1): 157-175.
7
8. Almeida CFCBR and Albuquerque UP (2002) Check-list of the family Lamiaceae in Pernambuco, Brazil. Brazilian Archives of Biology and Technology. 45: 343-353.
8
9. Bagci E and Kocak A (2008) Essential oil composition of the aerial parts of two Salvia L. (S. multicaulisVahl. Enum and S. tricochlada Bentham) species from east anatolian region (Turkey). International Journal of Science and Technology. 3: 13-18.
9
10. Kahraman A and Doghan M (2010) Comparative study of Salvia limbata C.A. and S.palaestina Bentham (sect. Aethiopis Bentham, Labiatae) from East Anatolia, Turkey. Acta Botanica Croatica. 69: 47-64.
10
11. Kintzios SE (2000) Sage (the genus Salvia). Hardwood Academic Publishers. Amsterdam, 269 p.
11
12. Li P, Wang Y, Sun X and Han J (2009) Using microsatellite and morphological markers to asses the genetic diversity 12 falcata (Medicago sativa spp. falcate) population from Eurasiia. African Journal of Biotehnology. 8: 2102-2108.
12
13. Mirza M and Sefidkon F (1999) Essential oil composition of two Salvia species from Iran, Salvia nemorosa L. and Salvia reuterana Boiss. Flavour and fragrance journal. 14: 230-232.
13
14. Mohammdhosseini M, Pazoki A and Akhlaghi H (2008) Chemical composition of the essential oils from flowers, stems, and roots of Salvia multicaulis growing wild in Iran.Chemistry of Natural Compounds.44: 127-128.
14
15. Sudarmono A and Hiroshi O (2008) Genetic differentiations among the populations of Salvia Japonica (Lamiaceae) and its related species. Journal of Biosciences. 15: 18-26.
15
16. Walker JB, Sytsma KJ, Treutlein J and Wink M (2004) Salvia (Lamiaceae) is not monophyletic: Implications for the systematics, radiation, and ecological specializations of Salvia and tribe Mentheae. The American Journal of Botany. 91: 1115-1125.
16
ORIGINAL_ARTICLE
چکیده های انگلیسی
https://jacb.ut.ac.ir/article_55459_ba1675aa9402394d7c605317033ef6ce.pdf
2015-03-21
1
11