ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر تنش های سرمایی، گرمایی و شیمیایی در القای آندروژنز در گیاه زینتی لیسیانتوس (Eustoma grandiflorum)
روشهای متعددی برای تولید گیاهان هاپلوئید وجود دارد که یکی از انواع کارآمد آنها آندروژنز بهویژه کشت میکروسپور است. نتایج مطالعات متعدد نشان میدهد که اعمال تنش بهمنزلۀ یک عامل محرک، در القای رویانزایی میکروسپور مؤثر است. در آزمایش اول اثر تیمار دمایی شامل تنش سرما و تنش گرما به همراه کنترل بررسی شد. در آزمایش دوم اثر 2,4-D و در آزمایش سوم اثر PEG-4000 در محیط کشت بررسی شدند. در ادامه از تنشهای دیگری شامل pH بالای محیط القا، اتانول و همچنین دور بالای سانتریفیوژ در القای آندروژنز استفاده شد. نتایج نشان داد که بر اثر پیشتیمار سرمایی ˚C 4 بهمدت یک روز تقسیم سلولی صورت گرفت؛ همچنین با تنش گرمایی ˚C 35 بهمدت دو روز تقسیم سلولی ایجاد شد. از میان تنشهای دمایی، پیشتیمار ˚C 35 بهمدت یک روز کارآمدترین تنش، در القای آندروژنز بود. بهترین تیمار تنش 2,4-D برای القای آندروژنز، غلظت 25 میلیگرم بر لیتر بود؛ که موجب ایجاد بیشترین ساختار چندسلولی شد. در تنش پلیاتیلن گلیکول نیز بیشترین تغییرات مطلوب با تیمار 84/0- مگاپاسکال مشاهده شد. pH های 5/6 و 7 سبب شروع تقسیم سلولی میکروسپورها و ایجاد ساختار چندسلولی شدند. پیشتیمار سانتریفیوژ با دور بالا، فقط سبب تولید میکروسپورهای متورم شد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53817_2b78aca6fe368373f958c040a2cfa9da.pdf
2014-05-22
1
12
تنشهای دمایی
تنشهای شیمیایی
کشت میکروسپور
PEG-4000؛ 2؛ 4-D
محمد مهدی
فخرائی
mmfakhraei@ut.ac.ir
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شیراز، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
مصطفی
عرب
mosarab@ut.ac.ir
2
استادیار گروه علوم باغبانی، پردیس ابوریحان - دانشگاه تهران، ایران
AUTHOR
مهران
عنایتی شریعت پناهی
m_shariatpanahi2002@yahoo.com
3
دانشیار بخش تحقیقات کشت بافت و انتقال ژن، پژوهشکدۀ بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، کرج، ایران
AUTHOR
طایفه افشاری ب.، عنایتی شریعتپناهی م. و وهابزاده م (1390) «بررسی جنینزایی میکروسپور در هیبریدهای مختلف گندم نان (Triticum aestivum L) و معرفی پیشتیمار تنشی 2,4-D برای افزایش کارایی جنینزایی». زیستفناوری گیاهان زراعی. 1(1): 13-21.
1
Höfer M, Touraev A and Heberle-Bors E (1999) Induction of embryogenesis from isolated apple microspores. Plant Cell Reports. 18: 1012-1017.
2
Hosp J, Ribaritst A, Szaszka K, Jin Y, Tasshpulatov A, Baumann M, Resch T, Friedmann C, Ankele E, Voronin V, Palme K, Touraev A and Heberle-Bors E (2011) A tobacco homolog of DCN1 is involved in cellular reprogramming and in developmental transitions. Available at precedings.nature.com (Nature Precedings: hdl:10101/npre.2011.5728.1).
3
Ichimura K and Korenaga M (1998) Improvement of vase life and petal color expression in several cultivars of cut Eustoma flowers by sucrose with 8-hydroxyquinoline sulfate. Bulletin of the National Research Institute of Vegetables, ornamental plants and tea, Japan. 13:31-39.
4
Ilić-Grubor K, Attree SM and Fowke LC (1998) Induction of microspore-derived embryos of Brassica napus L. with polyethylene glycol (PEG) as osmoticum in a low sucrose medium. Plant Cell Reports. 17(5): 329-333.
5
Li C, Yu M, Chen F and Wang S (2010) In vitro maturation and germination of Jatropha curcas microspores. International Journal of Agriculture and Biology. 12(4): 541-546.
6
Lichter R (1982) Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus. Zeitschrift fur Pflanzenphysiologie. 105: 427–434.
7
Pechan PM, Barteis D, Brown DCW and Schell J (1991) Messenger-RNA and protein changes associated with induction of Brassica microspore embryogenesis. Planta. 184: 161-165.
8
Pechan PM and Keller WA (1988) Identification of potentially embryogenic microspores in Brassica napus. Physiologia Plantarum. 74(2): 377–384.
9
Pechan PM and Keller WA (1989) Induction of microspore embryogenesis in Brassica napus L. by gamma irradiation and ethanol stress. In Vitro Cellular and Developmental Biology. 25(11): 1073-1074.
10
Peng M, Ziauddin A and Wolyn DJ (1997) Development of asparagus microspores in vivo and in vitro is influenced by gametogenic stage and cold treatment. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant. 33(4): 263-268.
11
Raghavan C, Ong EK, Dalling MJ and Stevenson TW (2006) Regulation of genes associated with auxin, ethylene and ABA pathways by 2,4-dichlorophenoxy-acetic acid in Arabidopsis. Functional and Integrative Genomics. 6: 60–70.
12
Reid MS (2001) Cut flowers and Greens. Department of Environmental Horticulture, University of California, Davis, CA. 36 p.
13
Sabehat A, Lurie S and Weiss D (1998) Expression of small heat-shock proteins at low temperatures: a possible role in protecting against chilling injuries. Plant Physiology. 117: 651-658.
14
Sefc KM, Ruckenbauer P and Regner F (1997) Embryogenesis in microspore culture of Vitis subspecies. Vitis. 36: 15-20.
15
Shariatpanahi ME, Bal U, Heberle-Bors E and Touraev A (2006) Stresses applied for the re-programming of plant microspores towards in vitro embryogenesis. Physiologia Plantarum. 127: 519–534.
16
ShariatpanahiME and Touraev A (2010) Microspores and their applications in basic and applied plant sciences. In: Columbus F (Eds.), Pollen: Structure, Types and Effects. Nova Science Publishers. pp. 217-234.
17
Supena EDJ, Muswita W, Suharsono S and Custers JBM (2006) Evaluation of crucial factors for implementing shed-microspore culture of Indonesian hot pepper (Capsicum annuum L.) cultivars. Scientia Horticulturae. 107: 226–232.
18
Yuan S, Su Y, Liu Y, Fang Z, Yang L, Zhuang M, Zhang Y and Sun P (2012) Effects of pH, MES, arabinogalactan-proteins on microspore cultures in white cabbage. Plant Cell Tissue Organ Culture. 110: 69–76.
19
عبدالهی م. ر.، معینی ا.، حدادی پ. و جلالی جواران م (1382) «رویانزایی از کشت جدایههای میکروسپوری در ارقام مختلف کلزا (.Brassica napus L)». پژوهش و سازندگی در زراعت و باغبانی. 60: 48-52.
20
عنایتی شریعتپناهی م. و امامی میبدی د (1388) «میکروسپور: سلولی هاپلوئید با کاربردهای متنوع در ژنتیک و اصلاح نباتات». مجله ژنتیک نوین. 4(3): 5-16.
21
فخرائی م. م.، عرب م.، عنایتی شریعتپناهی م.، لطفی م.، عزیزینیا ش. و ظلانوار ف (1390) «اثر متقابل غلظتهای مختلف و انواع کربوهیدرات و پنج نوع محیط کشت بر آندروژنز رقم ماریچی سفید خالص لیسیانتوس Eustoma grandiflorum 'Mariachi Pure White'». هفتمین همایش ملی بیوتکنولوژی جمهوری اسلامی ایران.
22
فخرائی م. م.، عرب م.، عنایتی شریعتپناهی م.، لطفی م.، عزیزینیا ش. و ظلانوار ف (1390) «تأثیر رقم، اندازۀ غنچه و مرحلۀ تکامل دانهگرده (میکروسپوروژنز) بر آندروژنز گل لیسیانتوس Eustoma grandiflorum از طریق کشت میکروسپور». همایش ملی کشاورزی پایدار – دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین – پیشوا. 133ـ 138.
23
فخرائی م. م.، عرب م.، عنایتیشریعت پناهی م.، لطفی م.، عزیزینیا ش. و ظلانوار ف (1390) «ارزیابی بهترین روش رنگآمیزی هستۀ میکروسپور گل لیسیانتوس Eustoma grandiflorum (با رنگ فلورسنتی DAPI و سه معرف استوکارمن، استواورسئین و فوشین)». هفتمین کنگرۀ باغبانی ایران. 357ـ 378.
24
فخرائی م. م.، عرب م.، عنایتیشریعت پناهی م.، لطفی م.، عزیزینیا ش. و ظلانوار ف (1390) «تعیین بهترین روش و محیط جداسازی (ایزولهکردن) و زمان و دور سانتریفیوژ در کشت میکروسپور گل لیسیانتوس Eustoma grandiflorum». هفتمین همایش ملی بیوتکنولوژی جمهوری اسلامی ایران.
25
فخرائی م. م.، عرب م.، عنایتی شریعتپناهی م.، لطفی م.، عزیزینیا ش. و یونسی حمزهخانلو م (1389) «بررسی مراحل تکامل دانهگرده (میکروسپوروژنز) در چند رقم گل لیسیانتوس Eustoma grandiflorumبا استوکارمن». دومین کنگرۀ ملی تخصصی زیستشناسی محققان سراسر کشور. ایران. صفحه 440.
26
ناصریان خیابانی ب.، مجد ف.، ودادی س.، رحمانی ا. و موسوی شلمانی م. ا (1384) «بررسی تأثیر ژنوتیپ، پیشتیمار سرمایی، دزهای پایین اشعۀ گاما و هورمون 2,4-D در واکنش به کشت پرچم گندم». مجلۀ علوم زراعی ایران. 7(1): 86-96.
27
Bakos F, Fábián A and Barnabás B (2007) Isolated microspore cultures of a Hungarian durum wheat (Triticum turgidum L.) cultivar, Martondur1. Acta Agronomica Hungarica. 55(2): 157–164.
28
Barinova I, Clement C, Martiny L, Baillieu F, Soukupova H, Heberle-Bors E and Touraev A (2004) Regulation of developmental pathways in cultured microspores of tobacco and snapdragon by medium pH. Planta. 219: 141–146.
29
Emamifar M, Shariatpanahi ME, Habibzadeh S, Nematzadeh GA and Oroojlo A (2008) Induction of microspore embryogenesis with 2,4-D instead of heat shock in Brassica napus L. cv. Topas. Proceeding of the second international student conference of biotechnology. University of Tehran.
30
Feher A, Pasternak TP and Dudits D (2003) Transition of somatic plant cells to an embryogenic state. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 74b: 201–228.
31
Gu HH, Hagberg P and Zhou WJ (2004) Cold pretreatment enhances microspore embryogenesis in oilseed rape (Brassica napus L.). Plant Growth Regulation. 42: 137-143.
32
Habibzadeh S, Shariatpanahi ME, Amiri R, Emamifar M, Oroojloo M, Nematzadeh G, Sadat Noori SA and Heberle-Bors E (2011) Effect of 2,4-D as a Novel Inducer of Embryogenesis in Microspores of Brassica napus L. Czech Journal of Genetics and Plant Breeding. 47(3): 114–122.
33
Halvy AH and Kofranek AM (1984) Evalution of lisianthus as a new flower crop. Hort Science. 19(6): 845-847.
34
Harbaugh BK (2007) LISIANTHUS. In: Anderson Neil O (Eds.), Flower Breeding and Genetics. Springer. 824p.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین محیط مناسب برای جوانه زنی غیرهم زیست بذرهای حاصل از خودگشنی ارکیدۀ فالانوپسیس رقم ‘کیوتو’
در این پژوهش جوانه زنی بذرهای حاصل از خودگشنی، درصد بقا و رشد پروتوکورم های ارکیدۀ فالانوپسیس رقم ‘کیوتو’ در کشت درونشیشهای و به روش غیرهمزیست بررسی شد. برای این منظور، از پنج نوع محیط کشت مختلف شامل وسین و ونت، موراشیگ و اسکوگ، یک دوم غلظت موراشیگ و اسکوگ، نودسون و فاست تغییریافته و تیمارهای افزودنیهای آلی شامل دو گرم پپتون، 15درصد شیر نارگیل استریل یا ترکیبی از هر دو آنها استفاده شد. بررسی نتایج جوانهزنی 30 روز بعد از کشت بذر نشان داد بهترین محیط کشت برای جوانهزنی بذرهای این رقم، محیط کشت نودسون تغییریافته تیمار ترکیبی پپتون همراه با شیر نارگیل (9/65درصد) دارد. محاسبۀ درصد بقا و رشد قطری پروتوکورمها 50 روز پس از کشت نشان داد بیشترین میزان بقای پروتوکورم در محیط کشت نودسون دارای تیمار پپتون (7/94درصد) وجود داشته و بیشترین رشد پروتوکورمها در محیط کشت فاست دارای تیمار ترکیبی پپتون همراه با شیر نارگیل (3/3 میلیمتر) رخ داده است.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53818_b6247fc81bb1ab2cee3a19d0daf1bfb4.pdf
2014-05-22
21
13
بقا و رشد پروتوکورم
پپتون
جوانهزنی بذر
شیر نارگیل
کشت غیرهمزیست
پریسا
شکرریز
parisashekarriz@gmail.com
1
کارشناس ارشد، گروه باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد مهرشهر کرج، کرج
LEAD_AUTHOR
شیرین
دیانتی دیلمی
dianati@ut.ac.ir
2
استادیار، گروه باغبانی، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت
AUTHOR
محسن
کافی
3
استاد گروه مهندسی و علوم باغبانی و فضای سبز، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
مسعود
میرمعصومی
4
مربی دانشکدۀ زیستشناسی، پردیس علوم، دانشگاه تهران، تهران
AUTHOR
1. Chen J and Chen Chang W (2004) Induction of repetitive emberyogenesis from seed-derived protocorms of Phalaenopsis amabilis var. formosaShimadzu. In Vitro Cell and Development Biology Plant. 40: 290-293.
1
2. Chen J and Chang W (2006) Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf explant of Phalaenopsis amabilis. In Vitro Cell and Development Biology Plant. 40: 290-293.
2
3. Dutta S, Chowdhury A, Bhattacharjee B, Nath PK and Dutta K (2011) In Vitro multication and protocorm development of Dendrobium aphyllum (Roxb) CEC Fisher. Biological and Enviromental Sciences. 7: 57-61.
3
4. FloraHolland (2010) Published estimates data base (PEDB). Available at http://www.floraholland.com/nl/overfloraholland/Cooperatie/Documents/.
4
5. Jayachandran PR, Veluchamy B and Britto J (2009) In Vitro Seed Germination and Protocorm Development of Dendrobium aqueum Lindl. A Rare Orchid Species from Eastern Ghats of Tamil Nadu. Botany Research International. 2(2): 99-102.
5
6.Lee Y, Chen MC and Huang CY (2010) Effect of medium composition on asymbiotic seed germination of five Phalaenopsis species. Acta Horticulture. 878: 225-230.
6
7. Maslili JA, Rosmah M and Latip M (2011) In Vitro Seed Germination of Bornean Endemic Orchids Dendrobium tetrachromum and Dendrobium hamaticalcar. Empowing Science. 122: 770-778.
7
8. Rachuwanshi AN, Mishra RR and Sharma GD (1985) Effect of Synthetic Media on Asymbiotic Seed Germination and Seedling Growth of Dendrobium nobile and Sarcanthus pallidus.Science Academy. 51(3): 360-363.
8
9. Sushmita B and Khan HA (2000) Effect of growth adjuvants on In Vitro seed germination of Phalaenopsis hybrid. Indian Journal of Horticulture. 57: 90-93.
9
10. Teob ES (1989) Orchids of Asia Singapore. Times Books International. Pp. 121-134.
10
11. Thongpukdee A, Thepsithar C and Rojanawong T (2010) Optimum condition for seed germination of Phalaenopsis silky moon. Acta Horticulture. 878: 237-242
11
12. Tu MC (1986) Studies on capsule development and effects of media composition on seed germination and seedling growth in Phalaenopsis (white hybrid). National Taiwan University, Masters Thesis.
12
13. Wing Y and Arditti J (2009) History of orchid propagation: a mirror of the history of biotechnology. Plant Biotechnology. 3: 1-56.
13
14. www.uiran.com/newscrawler/news/content
14
15. Xu Xia O,Sh Lin Shao, J Yao li, Ch, Zhong lin and Y Ju Bing (2004) Study on the factors factors affecting seed embryo germinating of butterfly orchid (Phalaenopsis). Acta Agriculture Zhejiangensis. 04.
15
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی واکنش لاین های موتانت برنج (Oryza sativa L.) به تنش شوری در مرحلۀ گیاهچه ای
بهمنظور بررسی تأثیر جهشزاهای شیمیایی بر رقم برنج ’طارم محلی‘ در شرایط تنش شوری، بذور رقم برنج ’طارم محلی‘تحت تیمار دو موتاژن شیمیایی اتیل متان سولفونات (14 میلیمولار) و سدیم آزید (2 میلیمولار)، قرار گرفت و در نسل دوم بوتههایی که از نظر صفات مهم اقتصادی مطلوب بودند، انتخاب شدند. گیاهچههای حاصل از این بوتهها در نسل سوم با استفاده از یک آزمایش فاکتوریل دوعاملی در قالب طرح پایۀ کاملاً تصادفی در سه تکرار، در دو سطح شوری صفر و 12 دسیزیمنس بر متر در محیط هیدروپونیک ارزیابی شد. نتایج پژوهش حاضر نشان میدهد که دو لاین موتانت حاصل از تیمار اتیل متان سولفونات در گروه متحمل قرار گرفتند که در مقایسه با شاهد (بدون اعمال موتاسیون) تحت تنش شوری بهتر عمل کردند و دو لاین حساس به شوری نیز تحت تیمار این موتاژن مشاهده شد، درحالیکه بیشتر لاینهای موتانت حاصل از تیمار سدیم آزید در تنش شوری مشابه با رقم شاهد عمل کردند. همچنین چند لاین حساس به شوری از این موتاژن شناسایی شد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53819_cef981baf34fdd5125b36ea5427b3db4.pdf
2014-05-22
23
30
اتیل متان سولفونات
برنج
تنش شوری
سدیم آزید
موتاسیون
زهرا
مجیدی
z.h.majidi@gmail.com
1
کارشناس ارشد، گروه بیوتکنولوژی و اصلاح نباتات، دانشکدۀ علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
غلامعلی
رنجبر
ali.ranjbar@gmail.com
2
دانشیار، گروه بیوتکنولوژی و اصلاح نباتات، دانشکدۀ علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
LEAD_AUTHOR
نادعلی
بابائیان جلودار
najelodar@yahoo.com
3
استاد، گروه بیوتکنولوژی و اصلاح نباتات، دانشکدۀ علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
نادعلی
باقری
a.bagheri@sanru.ac.ir
4
استادیار، گروه بیوتکنولوژی و اصلاح نباتات، دانشکدۀ علوم زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی و روابط بین صفات در برخی ژنوتیپ های کلزا با استفاده از روش های آماری چندمتغیره در دو شرایط رطوبتی
به منظور بررسی تنوع ژنتیکی ژنوتیپهای کلزا توسط تجزیه و تحلیلهای چندمتغیره در دو شرایط رطوبتی (نرمال و تنش) تعداد 16 ژنوتیپ با آرایش طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار تحت دو شرایط در دانشگاه رازی در سال 1386ـ 1387 بررسی شد. تجزیه به عاملها در شرایط نرمال نشان داد که نه عامل اول درمجموع 1/89 درصد تنوع کل دادهها را توجیه کردند و همچنین در شرایط تنش هشت عامل اول درمجموع 05/86 درصد تنوع کل دادهها را توجیه کردند. تجزیۀ علیت برای عملکرد روغن براساس ترتیب اهمیت صفات و نیز نتیجۀ رگرسیون گامبهگام بهترتیب دو صفت پرولین در مرحلۀ اوایل گلدهی و ارتفاع در مرحلۀ اواسط گلدهی در شرایط نرمال و دو صفت ارتفاع در مرحلۀ اواخر گلدهی و میانگین طول خورجین در شرایط تنش خشکی را انتخاب کردند. تجزیۀ خوشهای براساس کلیۀ صفات در شرایط نرمال به روش WARD، ژنوتیپها را در سه گروه قرار داد و بیشترین فاصلۀ ژنتیکی بین ژنوتیپهای Sunday و Shiralee مشاهده شد. در شرایط تنش به روش UPGMA نیز ژنوتیپها در سه گروه قرار گرفتند و دورترین قرابت بین ژنوتیپهای Sahara و Sunday بهدست آمد. بنابراین، پیشبینی میشود که تلاقی ژنوتیپهای Sunday و Sahara با Shiralee بهترین دورگها را ایجاد و در نسلهای در حال تفرق تنوع مطلوبی برای برنامههای بهنژادی فراهم کند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53820_e00b7a0802cd7528d934cc5eefe28c6b.pdf
2014-05-22
31
45
تجزیۀ خوشهای
تجزیۀ علیت
تنش خشکی
روشهای آماری چندمتغیره
کلزا
مهدی
کاکایی
mehdikakaei37@gmail.com
1
مربی گروه علمی مهندسی کشاورزی (ژنتیک و اصلاح نباتات)، دانشگاه پیام نور، تهران
AUTHOR
علیرضا
زبرجدی
zebarjadiali@yahoo.com
2
دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه ؛ دانشیار، گروه پژوهشی بیوتکنولوژی مقاومت بهخشکی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه
LEAD_AUTHOR
علی
مصطفایی
amostafaie@kums.ac.ir
3
استاد، بخش ایمونولوژی، مرکز تحقیقات بیولوژیـ پزشکی، دانشگاه علومپزشکی کرمانشاه، کرمانشاه
AUTHOR
عباس
رضایی زاد
arezaizad@yahoo.com
4
استادیار، بخش غلات، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی کرمانشاه، کرمانشاه
AUTHOR
1. امینی ف، سعیدی قا و ارزانیا (1387) «روابط بین عملکرد دانه و اجزای آن در ژنوتیپهای گلرنگ (Carthamus tinctorius L.)». علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. 45(12): 535-525.
1
2. چوگان ر (1386) روشهای تجزیۀ ژنتیکی صفات کمّی در اصلاح نباتات. نشر آموزش کشاورزی. 255 ص.
2
3. حاتم ملکی ح، کریمزاده ق، درویشزاده ر و علوی ر (1391) «تنوع ژنتیکی توتونهای شرقی با استفاده از روشهای آماری چندمتغیره». پژوهشهای زراعی ایران. 1(10): 106-100.
3
4. ربیعی ب و رحیمی م (1388) «ارزیابی روشهای گروهبندی ژنوتیپهای کلزا با استفاده از تجزیۀ تابع تشخیص خطی فیشر». علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. 47(13): 542-529.
4
5. سمیعزاده لاهیجی ح (1382) بررسی مارکرهای مولکولی همبسته با صفات آگرونومیک و کیفی در کلزا. پایاننامۀ دکتری اصلاح نباتات. دانشگاه تهران.
5
6. صبوری ح، محمدینژاد ق و فضلعلیپور م (1391) «انتخاب برای بهبود عملکرد با استفاده از روشهای آماری چندمتغیره در برنج». پژوهشهای زراعی ایران. 1(10): 162-150.
6
7. ضابط م و حسینزاده ع (1390) «تعیین مهمترین صفات مؤثر بر عملکرد ماش (Vigna radiate L. Wilczek) با استفاده از روشهای آماری چندمتغیره در شرایط تنش خشکی و بدون تنش». پژوهشهای حبوبات ایران. 1(2): 98-87.
7
8. طوسی مجرد م، قنادها م ر، خدارحمی م و شهابی س (1384) «تجزیه به عاملها برای عملکرد دانه و سایر خصوصیات گندم». پژوهش و سازندگی در زراعت و باغبانی. (67) :16-9.
8
9. فرشادفر ع (1380) اصول و روشهای آماری چندمتغیره. انتشارات طاق بستان، کرمانشاه. 312 ص.
9
10. کارگر س م ع، قنادها م ر، بزرگیپور ر، خواجه احمد عطاری ا ع و بابایی ح ر (1383) «ارزیابی شاخصهای تحمل به تنش خشکی در تعدادی از ژنوتیپهای سویا در شرایط آبیاری محدود». علوم کشاورزی ایران. 1(35): 142-129.
10
11. کاکایی م (1388) مطالعۀ اثر ژنوتیپ و تنش خشکی بر خصوصیات فیزیولوژیکی، مورفولوژیکی، فنولوژِیکی و بیوشیمیایی کلزای پاییزه. دانشگاه آزاد اسلامی. کرمانشاه. پایاننامۀ کارشناسی ارشد.
11
12. محمدی م، قنادها م ر و طالعی ع (1381) «بررسی تنوع ژنتیکی در لاینهای بومی گندم نان با استفاده از روشهای آماری چندمتغیره». نهال و بذر. 3(18): 347-328.
12
13. مقدم م، محمدی شوطی س ا و آقایی سربرزه م (1373) آشنایی با روشهای چندمتغیره. (ترجمه)، انتشارات پیشتاز علم. ص 47.
13
14. ناصری ف (1370) دانههای روغنی. انتشارات آستان قدس رضوی.
14
15. نرجسی و، زینالی خانقاه ح و زالی ع (1386) «بررسی رابطۀ ژنتیکی برخی از صفات مهم زراعی با عملکرد دانه در سویا از طریق روشهای آماری چندمتغیره». علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. 41(11): 235-227.
15
16. Ana MJ, Radovan M, Anto M, Zvonimir Z, Sonja I and Mirjana J (2008) Correlation and Path Analysis of Quantitative Traits in Winter Rapeseed (Brassica napus L.). Agriculturae Conspectus Scientificus.73(1).
16
17. Basalma D (2008) The Correlation and Path Analysis of yield and yield components of different winter rapeseed (B. napus ssp. oleifera L.) cultivars. Agriculture Biology Science. 4: 120-125.
17
18. Diepenbrock W (2000) Yield analysis of winter oilseed rape (Brassica napus L.): a review. Field Crop Research. 67: 35-49.
18
19. Harman HH (1976) Modern Factor Analysis, Third Edition Revised, University of Chicago Press.
19
20. Jobson JD (1992) Applied multivariate Data analysis. Volume 2, Categorical and multivariate methods, springer-verlag, New york.
20
21. Kis D, Maric S, Juric T, Antunovic M and Guberac V (2006) Performance of different erucic acid type oil seed rape cultivars in a Croatian agro-environment. Cereal Research Communications. 34(1): 437-440.
21
22. Leon J (1993) The importance of crop physiology for the breeding of oilseed rape. Fett Wissenschaf Technologie (Germ). 95: 283-287.
22
23. Mahasi MJ and Kamundia JW (2007) Cluster analysis in rapeseed (Brassica napus L.). African Journal of Agricultural Research. 2: 409-411.
23
24. Marjanovic-Jeromela A, Marinkovic R, Mijic A, Zdunic Z, Ivanovska S and Jankulovska M (2008) Agriculturae Conspectus Scientificus. 73(1): 13-18.
24
25. Mohammadi SA and Prasanna BM (2003) Analysis of genetic diversity in crop plants-salient statistical tools and considerations. Crop Science. 43: 1235-1248.
25
26. Rameeh V (2011) Correlation and path analysis in advanced lines of rapeseed (Brassica napus L.) for yield componets. Oilseed Brassica. 2(2): 56-60.
26
27. Ramee V (2012) Correlation and factor analyses of quantitative traits in rapeseed (Brassica napus L.). Agriculture Innovations and Research. 1(1): 2319-1473.
27
28. SeilerGJ and Stafford RE )1979( Factor analysis of components of yields in guar. Crop Science. 25: 905-908.
28
29. Sharma BD and Hore DK (1993) Multivariate analysis of divergence in upland rice. Indian Journal of Agriculture Science. 63: 515-517.
29
30. Sharma S (1996) Applied multivariate techniques. 1nd ed. John Wiley and Sons, New York. 493 p.
30
31. Smith HF (1986) A discriminant function for plant selection. Annals of human genetics. 7(3): 240-250.
31
32. Tadesse W and Bekele E (2001) Factor analysis of yield in grasspea (Lathyrus sativus L.). Lathyrus Newsletter. 2: 416-421.
32
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی پایداری عملکرد ژنوتیپ های جو با استفاده از روش GGE biplot
این پژوهش برای تعیین پایداری عملکرد بر روی 18 لاین امیدبخش جو و دو لاین شاهد شامل نصرت و MB-86-5 در شش منطقۀ معتدل شامل کرج، اصفهان، بیرجند، ورامین، زرقان و نیشابور بر پایۀ طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار و در دو سال زراعی (1388ـ 1390) انجام شد. بعد از انجام تجزیۀ مرکب، تجزیۀ پایداری با استفاده از روش گرافیکی و چندمتغیره GGE biplot انجام شد. در این روش ژنوتیپهای 1، 2، 5 و 16 از پایداری بسیار بالایی برخوردار بودند. هچنین ابرمحیط بهترتیب شامل 1. کرج، ورامین و زرقان، 2. نیشابور و بیرجند و 3. اصفهان شناسایی شدند. برترین ژنوتیپها برای این سه ابرمحیط بهترتیب ژنوتیپهای 2، 5 و 16 هستند. بنابراین، با توجه به نتایج پژوهش حاضر، ژنوتیپهای 2 (Kavir/Badia/3/Torsh/9cr.279-07/Bgs/4/Karoon/Kavir) با میانگین عملکرد 626/6 تن در هکتار و ژنوتیپ 16 (ZBL-2640) با میانگین عملکرد 438/6 تن در هکتار بعد از ژنوتیپ شاهد (1) با میانگین عملکرد 492/6 تن در هکتار بهمنزلۀ سازگارترین ژنوتیپها شناخته و معرفی میشوند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53821_3c2ce4c2d62c0ef8ccb954fdd7905024.pdf
2014-05-22
47
58
ابرمحیط
اثر متقابل ژنوتیپ × محیط
اقلیم معتدل
پایداری
سازگاری
سحر
صیاد
sahar_sayad@ymail.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرج
LEAD_AUTHOR
منوچهر
خدارحمی
2
استادیار، بخش غلات، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، کرج
AUTHOR
حمیدرضا
نیکخواه
3
مربی، بخش غلات، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، کرج
AUTHOR
بهزاد
سرخیله لو
4
استادیار، بخش غلات، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، کرج
AUTHOR
حمید
تجلی
5
کارشناس ارشد، بخش اصلاح بذر، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان خراسان جنوبی
AUTHOR
منوچهر
طاهری
6
مربی، بخش اصلاح بذر، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان تهران، ایران
AUTHOR
فضلاله
حسنی
7
مربی، بخش اصلاح بذر، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان فارس، ایران
AUTHOR
مجید
طاهریان
8
مربی، بخش اصلاح بذر، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان خراسان رضوی، ایران
AUTHOR
مهرداد
محلوجی
9
مربی، بخش اصلاح بذر، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، ایران
AUTHOR
1. پورداد س و مقدم م ج (1391) بررسی اثر متقابل ژنوتیپ در محیط به روش GGE بایپلات در گلرنگ بهاره. تولید و فراوری محصولات زراعی و باغی. 2(6) :108- 99.
1
2. کوچکی ا، سرخیالهلو ب و اسلامزاده حصاری م (1391) پایداری عملکرد ژنوتیپهای امیدبخش جو در مناطق سرد ایران با استفاده از روش GGE biplot. بهنژادی نهال و بذر. 1(4): 28.
2
3. نورمحمدی ق، سیادت ع و کاشانی ع (1384) زراعت غلات. دانشگاه شهید چمران اهواز. 440 ص.
3
4. نیکخواه ح ر، مرتضویان م، حسنی م، شریف حسینی ف، طاهری م، محلوجی م و محمدی م (1385) دوازدهمین کنگره ژنتیک ایران. صص. 6-12.
4
5. Ahmadi J, Vaezi B and Fotokian H (2012) Graphical analysis of multi-environment trials for barley yield using AMMI and GGEbiplot under rain-fed conditions. Plant physiology and breeding. Issue1. 43p.
5
6. Choukan R (2011) Genotype, environment and genotype × environment interaction effects on the performance of maize (Zea mays L.) inbred lines. Crop Breeding. 1(2): 97-103.
6
7. Farshadfar E, Safari H and Jamshidi B (2012) GGEbiplot of adaptation in wheat substitution lines. Agriculture and crop science. 4(13): 877-888.
7
8. Farshadfar E Mohamadi H, Aghaee M and Vaisi Z (2012) GGEbiplot of analysis of genotype ×environment in wheat barley disomic additional genotypes. Crop science. 6(6): 1074-1079.
8
9. Gabriel KR (1971) The biplot graphic display of matrices with application to principal component analysis. Biometrika. 58: 453-467.
9
10. Jalata Zerihun (2011) GGEbiplot analysis of multi-environment yield trials of barley (Hordeum Vulgare L.) genotype in southeaster Ethiopia. Plant breeding and genetics. 5(1): 57-59.
10
11. Mohamadi R, Armiun M, Zadhasan E, Ahmadi M and Sadeghzadeahari D (2012) Genotype × environment interaction for grain yield of rainfed durum wheat using the GGE biplot model. Plant and seed improvement. 28(3): 503-518.
11
12. Sabaghnia N, Dehghani H and Sabaghpour SH (2008)Graphic analysis of genotype × environment interaction for lentil (Lens culinaris Medik) yield in Iran. Agronomy. 100: 760-764.
12
13. Yan W, Hunt A, Sheng H and Szlavnics L (2000) Cultivar evaluation and mega-environment investigation based on The GGEbiplot. Crop Science. 40: 597-605.
13
14. Yan W (2002) Singular value partitioning in biplot analysis of multienvironment trial data. Agronomy. 94: 99-996.
14
15.Yan W and Kang MS (2003) GGEbiplot Analysis: A Graphical Tool For Breeders ,Geneticists and Agronomists. Boca.CRC press. Boca Raton. Fl, Usa.
15
16. Yan WK, Baoluo MS, Sheila M and Paul WL (2007) GGEbiplot vs. Ammi analysis of genotype-by-environment data. Crop Science. 47: 643-653.
16
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع صفات مورفولوژی، فنولوژی و عملکرد اسانس در جمعیت های چهارگونه بابونه Anthemis tinctoria, A. haussknechtii, A.pseudocotula A. Altissima در شرایط مزرعه
بهمنظور بررسی صفات مورفولوژی و فنولوژی خصوصیات 24 جمعیت از چهار گونه بابونه از جنسAnthemis آزمایشی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار در سال زراعی 1390ـ 1391 در مزرعۀ ایستگاه تحقیقاتی البرز واقع در شهر کرج به اجرا درآمد. 13 صفت قطر طولی و عرضی تاج پوشش، سطح تاج پوشش، ارتفاع و تعداد گل در بوته، زمان گلدهی و برداشت، وزن تر و خشک سر شاخه، درصد و عملکرد اسانس، دمای تجمعی رشد روزانه زمان گلدهی و برداشت اندازهگیری و ارزیابی شدند. مقایسۀ میانگین بین چهار گونه نشان داد که گونۀ A. tinctoria بیشترین میانگین عملکرد اسانس و گونۀ A. pseudocotula بیشترین میانگین وزن سرشاخه، قطر تاج پوشش، ارتفاع گیاه نسبت به سایر گونهها را داشت. مقایسۀ میانگین بین جمعیتهای چهار گونه نشان داد که جمعیت گالیکش (Anthemis haussknechtii) بیشترین مقدار میانگین سطح تاج پوشش، ارتفاع گیاه، تعداد گل، و وزن تر سرشاخه؛ و جمعیت بانه2 (Anthemis tinctoria) بیشترین عملکرد اسانس را نسبت به سایر جمعیتها را داشتند. باتوجه به همبستگی مثبت بین صفات رویشی و زایشی گونههای جنس Anthemis، نتیجهگیری شد که عملکرد اسانس تابعی از صفات وزن تر و خشک سرشاخه، قطر تاج پوشش و ارتفاع بوته بود. با تجزیۀ خوشهای جمعیتهای چهار گونه جنس Anthemis به چهار گروه تقسیم شدند و لذا قرارگرفتن جمعیتها داخل هر گروه، دلیل بر خویشاوندی آنها بود.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53822_91b3a52d7334c4e07f17467649999d91.pdf
2014-05-22
59
74
بابونه
تاج پوشش
دمای تجمعی رشد روزانه (GDD)
سرشاخه
محمد علی
علیزاده
alizadeh202003@gmail.com
1
دانشیار، بخش بانک ژن منابع طبیعی، مؤسسة تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
ساناز
یاریاب
sanazyaryab@yahoo.com
2
دکارشناس ارشد، گروه باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج
AUTHOR
علی اشرف
جعفری
aliashrafj@gmail.com
3
استاد، بخش بانک ژن منابع طبیعی، مؤسسة تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، تهران
AUTHOR
پروین
صالحی شانجانی
psalehi@rifr-ac.ir
4
استادیار، بخش بانک ژن منابع طبیعی، مؤسسة تحقیقات جنگلها و مراتع کشور، تهران
AUTHOR
1. افتخاری م (1390) بررسی تنوع ژنتیکی و مورفولوژیکی برخی تودههای بابونه. پایاننامه کارشناسی ارشد، رشته اصلاح نباتات، دانشگاه تهران.
1
2. امیدبیگی ر (1374-1376) رهیافتهای تولید و فرآوری گیاهان دارویی، جلدهای اول (انتشارات فکر روز، 283 ص) و دوم (انتشارات طراحان نشر، 424 ص).
2
3. پیرخضری م، حسنی م و فخرطباطبایی م (1388) «ارزیابی مورفولوژیکی تعدادی از گونههای بابونه در دو جنس آنتیمیس و ماتریکاریا در ایران Anthemis sppوMatricaria spp». علوم باغبانی. 23(2): 119-130.
3
4. خاموشی ح (1391) بررسی عملکرد و صفات مورفولوژیکی جمعیتهای مختلف چهار گونه بابونهA.triumfetti, A.tinctoria, A.pseudocotula, T.partheniumدر دو تاریخ کاشت. پایاننامه کارشناسی ارشد، رشته اصلاح نباتات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تاکستان. صص. 128-1.
4
5. دستبرهان س، زهتاب سلماسی س، نصرالهزاده ص و توسلی ع (1389) «تأثیر برخی از ریزوباکترهای محرک رشد و کود نیتروژنی بر ویژگیهای مورفولوژیک بابونۀ آلمانی Matricaria chamomile». بومشناسی کشاورزی. 2(4): 573-565.
5
6. عادلی ن (1391) بررسی تنوع ژنتیکی و مورفولوژیکی و عملکرد اسانس جمعیتهای بابونه Anthemis haussknechttitii و Anthemis triumfettii و با استفاده از روشهای آماری چندمتغیره. پایاننامه کارشناسی ارشد، رشته اصلاح نباتات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج. صص. 127-1.
6
7. عامری ع ا، نصیری محلاتی م و رضوانی مقدم پ (1386) «اثر مقادیر مختلف نیتروژن و تراکم بر کارایی مصرف نیتروژن، عملکرد گل و مواد مؤثره همیشه بهار Calendula officinalis». پژوهشهای زراعی ایران. 5: 325-315.
7
8. علیزاده م ع، خاموشی ح، جعفری ع ا و دانشیان ج (1391) «اثر تاریخ کاشت بر رشد رویشی و زایشی چهار گونه Anthemis prythrum، A. pseudocou، A. tinctoria و A. triumfetti»، دوازدهمین کنگره علوم زراعت و اصلاح نباتات ایران (14 الی 16 شهریور ماه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج).
8
9. قهرمان ا (1375) کد عمومی خانوادهها و جنسهای فلور ایران. انتشارات مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور.
9
10. مظفریان و (1387) فلور ایران، شماره 59: تیره کاسنی (Compositae): قبیلههای Anthemideae و Echinopeae. انتشارات مؤسسه جنگلها و مراتع، چاپ اول، ص 169.
10
11. مهدیخانی ه، سلوکی م، زینلی ح و امام جمعه ع (1386) «بررسی تنوع ژنتیکی تودههای بابونه آلمانی براساس صفات مورفولوژیکی». سومین همایش گیاهان دارویی، دانشگاه شاهد تهران، ص 17.
11
12. Cirecell AG, Demastro G and Nano GM (1993) Comparision of chamomile biotype (Chamomilla recutita L.) Rausch. Acta Horticulture. 330: 211-212.
12
13. Emongor VE, Chweya JA, Key ASO and Munavu RM (1990) Effect of nitrogen and phosphorus on the essential oil yield and quality of chamomile (Matricaria chamomilla L.) flowers. East African Agricultural and Foresty. 55(4): 261-264.
13
14. Frank AB, Sedives KH and Hofmann l (1993) Determining grazing reading for native and tame pastures. Noth Dakota Univ. Ext. Serv. Bull., R-1061. Fargo, N.D. implication. - Proceedings of the Royal Society of Edinburgh. 89B: 45-58.
14
15. Leto C, Carrubba A and Cibella R (1997) Effect of sowing deity on chamomile (Chamomilla recutita) in a semi arid Sicilian environment. Horticultural Abstracts, 5326.
15
16. Siddiqui MH, Oad FC and Jmaro GH (2006) Emergence and nitrogen use efficiency of maize under different tillage operation and fertility levels. Asian Journal of Plant Sciences. 5(3): 508-510.
16
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد ترکیب پذیری و هتروزیس در توده های خربزه و طالبی ایرانی از طریق تلاقی دای آلل
برای برآورد وراثتپذیری، هتروزیس، ترکیبپذیری عمومی و خصوصی و رابطۀ بین آنها در صفات تعداد میوه در بوته، میانگین تعداد روز تا رسیدن نخستین میوه، عملکرد در بوته، میانگین وزن میوه و ضخامت گوشت میوۀ هفت تودۀ ملون ایرانی (’تاشکندی‘، ’خاتونی‘، ’میرپنجی‘، ’سوسکی سبز‘، ’گرمک‘، ’گلپایگان‘ و ’آران1‘) در یک طرح دایآلل کامل تلاقی داده شدند و هیبریدها برای ارزیابی صفات مورد نظر در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار کشت شدند. تجزیۀ واریانس صفات نشاندهندة تفاوت معناداری در میان دورگها بود، بنابراین برای تجزیۀ ترکیبپذیری روش نخست گریفینگ بهکار گرفته شد. میزان ترکیبپذیری خصوصی عملکرد در بوته از ترکیبپذیری عمومی آن بیشتر بود که نشاندهندة غالببودن عمل غیرافزایشی ژنهاست. اثرات ترکیبپذیری عمومی برای اغلب والدها در صفات ارزیابیشده معنادار بود. وراثتپذیری بالای خصوصی برای صفات تعداد میوه در بوته، میانگین وزن میوه، تعداد روز تا رسیدن و ضخامت میوه (بهترتیب 83/0، 82/0، 79/0 و 74/0) نشاندهندة اثر کم محیط بر این صفات و نقش بیشتر اثرات افزایشی بود. بیشترین وراثتپذیری خصوصی برای صفت تعداد میوه در بوته (83/0) برآورد شد. هتروزیس مطلوبی براساس والد برتر برای عملکرد در بوته مشاهده شد (78/15درصد)، بنابراین، با استفاده از تجمع ژنهای افزایشی و غیرافزایشی میتوان ارقام هیبرید برتر را برای صفات مهم زراعی خربزه اصلاح کرد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53823_647aa37228b22526094abc226ac948fc.pdf
2014-05-22
75
89
ترکیبپذیری عمومی و خصوصی
عمل افزایشی ژن
گریفینگ
وراثتپذیری
هتروزیس
محمود
رقامی
mraghami@vru.ac.ir
1
استادیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولیعصر رفسنجان
AUTHOR
محمدرضا
حسندخت
mrhassan@ut.ac.ir
2
دانشیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
ذبیح الله
زمانی
zzamani@ut.ac.ir
3
استاد گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
محمد رضا
فتاحی مقدم
fattahi@ut.ac.ir
4
دانشیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
عبدالکریم
کاشی
akkashi@ut.ac.ir
5
استاد گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
1. بینام (1390) آمارنامه کشاورزی محصولات زراعی سال زراعی 1388ـ 1389. جلد اول، وزارت جهاد کشاورزی، معاونت برنامهریزی و اقتصادی، دفتر آمار و فناوری اطلاعات. 119 ص.
1
2. مقدم م و امیری اوغان ح (1389) روشهای بیومتری در تجزیه ژنتیک کمی (ترجمه). انتشارات پریور، تبریز. 432 ص.
2
3. فیضیان ا، دهقانی ح، رضایی ع و جلالی جواران م (1388) تجزیۀ ژنتیکی عملکرد و اجزای آن در خربزه بهروش دایآلل. علوم باغبانی ایران. 40(1): 106-95.
3
4. Backer RJ (1978) Issues in diallel analysis. Crop Science. 18: 533-536.
4
5. Biying L, Shan G, Deyi N, By L and Dy N (2002) Inheritance and heterotic vigor of main economic characteristics of hybrid melon crossed by thin-skinned and thick-skinned melons. Fujian Agricultural Sciences. 17(4): 219.
5
6. FAO (2010) FAOSTAT agricultural database. http://apps.fao.org.
6
7. Feyzian E, Dehghani H, Rezai AM and Jalali Javaran M (2009) Diallel cross analysis for maturity and yield-related traits in melon (Cucumis melo L.). Euphytica. 168: 215-223.
7
8. Fonseca S and Paterson FL (1968) Hybrid vigor in a seven parent diallel cross in common winter wheat. Crop Science. 8: 85-88.
8
9. Gardner EJ (1968) Principle of Genetics. John Wiely, New York.
9
10. Gardner CP and Eberhart SA (1966) Analysis and interpretation of the variety cross diallel and related population. Biometrics. 22: 439-452.
10
11. Griffing B (1956) Consepts of general and specific combining ability in relation to diallel crossing system. Australian Biological Science. 9: 436-493.
11
12. Hallauer AR and Miranda JB (1988) Quantitative Genetics and Maize Breeding, Iowa State University Press, Ames.
12
13. Iathet C and Piluek K (2006) Heritability, heterosis and correlations of fruit characters and yield in Thai slicing melon (Cucumis melo L. var. Conomon makino). Kasetsart Journal, Natural Sciences. 40(1): 20-25.
13
14. Kalb TJ and Davis DW (1984a) Evaluation of combining ability, heterosis and genetic variance for fruit quality characteristics in bush muskmelon. American Society for Horticultural Sciences. 109(3): 411-415.
14
15. Kalb TJ and Davis DW (1984b) Evaluation of combining ability, heterosis and genetic variance for yield, maturity and plant characteristics in bush muskmelon. American Society for Horticultural Sciences. 109(3): 416- 419.
15
16. Kirkbride JH (1993) Biosystematic Monograph of the Genus Cucumis (Cucurbitaceae). Parkway, North Carolina.
16
17. Kitroongruang N, Poo-Swang W and Tokumasu S (1992) Evaluation of combining ability, heterosis and genetic variance for plant growth and fruit quality characteristics in Thai-melon (Cucumis melo var ranians Naud.) Scientia Horticulturae. 50(1): 79-87.
17
18. Lippert LF and Legg PD (1972a) Appearance and quality characters in muskmelon fruit evaluated by a ten- cultivar diallel cross. American Society for Horticultural Sciences. 97(1): 84-87.
18
19. Lippert LF and Legg PD (1972b) Diallel analyses for yield and maturity characteristics in muskmelon cultivars. American Society for Horticultural Sciences. 97(1): 87-90.
19
20. Monforte AJ, Eduardo I, Abad S and Arus P (2005) Inheritance mode of fruit traits in melon: Heterosis for fruit shape and its correlation with genetic distance. Euphytica. 144: 31-38.
20
21. Om YH, Oh DG and Hong KH (1987) Evaluation of heterosis and combining ability for several major characters in oriental melon. Research Report of the Rural Development Administration Horticulture Korea Republic. 29(1): 74-76.
21
22. Phumichai C, Doungchan W, Puddhanon P, Jampatong S, Grudloyma P and Kirdsr C (2008) SSRbased and grain yield-based diversity of hybrid maize in Thailand. Field Crop Research. 108: 157-162.
22
23. Raghami M, Lopez-Sese AI, Hasandokht MR, Zamani Z, Fatahi Moghadam MR and Kashi A (2014) Genetic diversity among melon accessions from Iran and their relationships with melon germplasm of diverse origins using microsatellite markers. Plant Systematics and Evolution. 300: 139-151.
23
24. Robinson RW and Decker-Walters DS (1997) Cucurbits. University Press, New York.
24
25. Roy D (2000) Plant breeding analysis and exploitation of variation. Alpha Science International LTD. Pp. 701.
25
26. Zalapa JE, Staub JE and McCreight JD (2006) Generation means analysis of plant architectural traits and fruit yield in melon. Plant Breeding. 125: 482-487.
26
27. Zalapa JE, Staub JE and McCreight JD (2008) Variance component analysis of plant architectural traits and fruit yield in melon (Cucumis melo L.). Euphytica. 162(1): 129-143.
27
28. Zhang Y, Kang MS and Lamkey KR (2005) DIALLEL-SAS05: A comprehensive program for Griffing’s and Gardner-Eberhart analyses. Agronomy. 97: 1097-1106.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تحمل به خشکی هیبریدهای مونوژرم چغندر قند در شرایط کشت درون شیشه ای با استفاده از پلی اتیلن گلیکول (6000 PEG)
پژوهش حاضر بهمنظور ارزیابی میزان تحمل به خشکی هیبریدهای جدید مونوژرم چغندرقند با استفاده از پلیاتیلن گلیکول 6000، در شرایط کشت درونشیشهای انجام شد. این آزمایش بهصورت فاکتوریل بر پایۀ طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار، در مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ بذر چغندرقند (کرج) در سال 1392 انجام شد. تعداد 23 هیبرید جدید مونوژرم چغندرقند به همراه دو شاهد متحمل و معمولی در دو سطح نرمال (پتانسیل اسمزی صفر) و تنش خشکی (7/0- مگاپاسکال) کشت شدند. پس از شش هفته، صفاتی از قبیل طول ریشهچه و ساقهچه، وزن تر و خشک ریشهچه و ساقهچه، طول، وزن تر و وزن خشک گیاهچه اندازهگیری شدند. تجزیۀ واریانس دادهها نشان داد که اثر سطوح تنش و اثر متقابل ژنوتیپ در تنش برای تمامی صفات بررسیشده معنادار شده است. اثر ژنوتیپ نیز برای تمامی صفات بهغیر از وزن خشک ریشهچه معنادار شد. براساس نتایج حاصل از تجزیۀ خوشهای به روش Ward، هیبریدهای مطالعهشده تحت شرایط نرمال و تنش خشکی از نظر خصوصیات گیاهچهای بهترتیب در سه و چهار گروه مختلف قرار گرفتند که در شرایط نرمال هیبریدهای 2، 21، 22، 3، 23 و 20 و در شرایط تنش نیز هیبریدهای 13، 4 و 3 بهمنزلۀ گروه برتر شناخته شدند. همچنین بهمنظور مقایسۀ میزان تحمل به خشکی و غربال نهایی هیبریدهای متحمل و برتر، از شاخص تحمل به تنش (STI) استفاده شد و هیبریدهای 13، 22، 23، 21، 7، 4، 20 و 3 بهمنزلۀ متحملترین هیبریدها نسبت به تنش خشکی در مرحلۀ گیاهچهای معرفی شدند که در کارهای اصلاحی آینده میتوانند توسط پژوهشگران بهکار گرفته شوند.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53824_c58262804a39fa402e65df8f7e6d8e57.pdf
2014-05-22
91
104
ارزیابی
تنش
شاخص STI
شرایط آزمایشگاه
مونوژرم
هیبرید
الهه
غفاری
e.gh67@yahoo.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت
AUTHOR
اباذر
رجبی
abazar.rajabi@yahoo.com
2
استادیار، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ بذر چغندرقند، کرج
AUTHOR
علی
ایزدی دربندی
aizady@ut.ac.ir
3
دانشیار گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت
LEAD_AUTHOR
فرانک
روزبه
fardalia@yahoo.com
4
مربی، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ بذر چغندرقند، کرج
AUTHOR
رضا
امیری
ramiri@ut.ac.ir
5
عضو هیئت علمی پردیس ابوریحان-دانشگاه تهران
AUTHOR
رضا
امیری
ramiri@yahoo.com
6
دانشیار گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
AUTHOR
1. اصغری م (1371) «اثر اتیلن در تنظیم اسمزی و رشد بافتهای محوری و لپهای دانۀ آفتابگردان در شرایط تنش خشکی». علوم وصنایعکشاورزی. 7: 145-137.
1
2. دادخواه ع ر (1385) «تأثیر تنش شوری بر جوانهزنی و رشد گیاهچۀ چهار ژنوتیپ چغندرقند (Beta vulgaris)». پژوهش و سازندگی در زراعت و باغبانی. 70: 93-88.
2
3. ردائی الاملی ز، عبداللهیان نوقابی م، اکبری غ ع، روزبه ف و ساداتنوری س ا (1389) «اثر تنش خشکی با استفاده از پلیاتیلن گلیکول (6000PEG ) در محیط کشت جامد روی خصوصیات گیاهچه ژنوتیپهای چغندرقند». علوم زراعی ایران. 12(3): 290-279.
3
4. روزبه ف، امیری ر. و احمدی م (1385) بررسی منابع مقاومت به خشکی در چغندرقند از طریق کشت بافت. انتشارات مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ بذر چغندرقند. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی.
4
5. روزبه ف، داودی د و مجیدی ا (1390) «کاربرد نانوذرات نقره در کنترل آلودگی میکروبی و بازیابی گیاهچههای دابلهاپلوئید چغندرقند در شرایط in vitro». علوم گیاهان زراعی ایران. 42(3): 452-445.
5
6. سلیم ف، سیدشریفی ر و اکرم قادری ف (1387) «بررسی تأثیر تنش خشکی بر جوانهزنی و رشد گیاهچۀ ارقام چغندرقند در شرایط آزمایشگاهی». دانشکشاورزی. ۱۸(2): 93-81.
6
7. فارضان م و گلکاری ص (1392) «تأثیر تنش خشکی بر روی رشد و نمو چغندرقند». اولین همایش ملی علوم کشاورزی، دانشگاه پیام نور استان آذربایجان غربی، مرکز نقده.
7
8. Fernandez GCJ (1992) Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance In Adaptation of Food Crops to Temperature and Water Stress, C.G. Kuo (Ed.), AVRDC Publication. Shanhua. Taiwan: 257-270.
8
9. Jamil M and Rha ES (2007) Gibberellic Acid (GA3) Enhance Seed Water Uptake, Germination and Early Seedling Growth in Sugar Beet under Salt Stress. Pakistan Journal of Biological Sciences. 10(4): 654-658.
9
10. Kaya MD, Okcu G, Atak M, Cikili Y and Kolsarici O (2006) Seed treatments to overcome salt and drought stress during germination in sunflower (Helianthus annuus L.). Europ. J. Agron. 24: 291-295.
10
11. Macar TK, Ozlem T and Ekmekci Y (2009) Effect of deficit induced by PEG and NaCl on chickpea (Cicer arietinum L.) cultivars and lines at early seedling stages. Gazi University Journal of Science. 22(1): 5-14.
11
12. Monti A, Amaducci MT, Pritoni G and Venturi G (2006) Variation in carbon isotope discrimination during growth and at different organs in sugar beet (Beta vulgaris L.). 98(2-3): 157-163.
12
13. Morashige T and Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Pl. 15: 473-497.
13
14. Mousavi SS, Samadi BY, Zali A, Ghannadha M, Omidi M and Naghavi M (2005) Investigation on the effect of abscisic acid on drought stress induction in wheat seedling. Czech J. Genet.Plant Breed. 41: 273-280.
14
15. Nan R, Carman JG and Salisbury FB (2002) Water stress, Co2 and photo period influencehormone levels in wheat. Plant Physiology. 159: 307-312.
15
16. Rasaei B, Ghobadi ME, Khas-Amiri M and Ghobadi M (2013) Effect of osmotic potential on germination and seedling characteristics of soybean seeds. Agriculture and Crop Sciences. 5(11): 1265-1268.
16
17. Sadeghian SY and Yavari V (2004) Effect of water-deficit stress on germination and early seedling growth in sugar beet. Agronomy and Crop Science. 190(2): 138-144.
17
18. Takel A (2000) Seedling emergence and growth of sorghum genotypes under variable soil moisture deficit. Agronomy. 48(1): 95-102.
18
19. Ward Junior JH (1963) Hierarchical Grouping to Optimize an Objective Function. Journal of the American Statistical Association. 58: 236-244.
19
20. Whalley WA, Bengough AG and Dextra AR (1998) Water stress induced by PEG decrease the maximum growth pressure of the roots of' Pea Seedling. Experimental Botany. 49(327): 1689-1694.
20
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعۀ ژنتیکی دو گونۀ وحشی زعفران با استفاده از صفات مورفولوژی و نشانگر مولکولی RAPD
در این پژوهش، تنوع ژنتیکی 25 ژنوتیپ زعفران ایرانی از سه گونۀ زعفران (Crocus speciosus، Crocus cancellathus وCrocus sativus) با استفاده از 16 صفت مورفولوژی و نشانگر RAPD ارزیابی شد. در صفات تعداد برگ در بوته، طول گلبرگ، وزن گل، ارتفاع ساقۀ گلدهنده و طول کلاله، گونۀ زعفران زراعی (C. sativus) با گونۀ speciosus متفاوت بود، ولی با گونۀ cancellatus تفاوت معناداری نداشت. از نظر صفات تعداد پوشش بیرونی و وزن خشک کرمها، گونۀ زعفران زراعی با گونۀ cancellatus متفاوت بود و با گونۀ speciosus شباهت داشت. 19 آغازگر تصادفی RAPD در انجام واکنش PCR بررسی شدند. درمجموع 276 باند در کل نمونهها تکثیر یافتند که از بین آنها 261 باند چندشکل بودند و ضریب کوفنتیکی 96/0r= بهدست آمد. تجزیۀ خوشهای براساس نوارهای چندشکل و با استفاده از ضریب تشابه جاکارد و به روش UPGMA انجام گرفت و نمونهها در حد تشابه 36/0 به چهار گروه مجزا تقسیم شدند. همچنین در این روش مانند صفات مورفولوژیک C. speciosus از دو گونۀ دیگر جدا شد. زعفران زراعی در حد تشابه 28/0 بهخوبی از دو گونۀ cancellatus و speciosus جدا شد.
https://jacb.ut.ac.ir/article_53825_1bc76877a0690666113131b896830384.pdf
2014-05-22
105
118
تنوع ژنتیکی
زعفران
RAPD
UPGMA
بیتا
خوانساری نژاد
b_khansari@ut.ac.ir
1
دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی و فضای سبز، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
محمدرضا
حسندخت
mrhassan@ut.ac.ir
2
دانشیار، گروه علوم باغبانی و فضای سبز، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
وحیده
ناظری
nazeri@ut.ac.ir
3
دانشیار گروه علوم باغبانی و فضای سبز، دانشکدۀ علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
AUTHOR
1. ابراهیمزاده ح، رجبیان ط، کرمیان ر، ابریشمچی، پ و صبورا ع (1385) (زعفران ایران با نگاهی پژوهشی). انتشارات اطلاعات، تهران. 644 ص.
1
2. ابریشمی م ح (1383) زعفران از دیرباز تا امروز. انتشارات امیرکبیر. 832 ص.
2
3. نقوی م ر، قرهیاضی ب و حسینی سالکده ق (1388) نشانگرهای مولکولی. انتشارات دانشگاه تهران، تهران. 340 ص.
3
4. قهرمان ا و عطار ف (1377) تنوع زیستی گونههای گیاهی ایران. انتشارات دانشگاه تهران. 212 ص.
4
5. کافی م (1381) زعفران فناوری تولید و فراوری. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد. 276 ص.
5
6. Beiki A, Keifi F and Mozafari J (2010) Genetic differentiation of Crocus species by random amplified polymorphic DNA. Genetic Engineering and Biotechnology. Pp. 1-10.
6
7. Domyati FM, Younis R, Edris S, Mansour A, Sabir G and Bahieldin A (2011) Molecular markers associated with genetic diversity of some medicinal plants in Sinai. Medicinal Plants Research. 5(2): 200-210.
7
8. Grilli Caiola M, Caputo P and Zanier R (2004) RAPD analysis in Crocus sativus L. accessions and related Crocus species. Biologia Plantarum. 48(3): 375-380.
8
9. Hosseinzadeh H, Abootorabi A and Sadeghnia HR (2008) Protective effect of Crocus sativus stigma extract and crocin (trans-crocin 4) on methyl methanesulfonate–induced DNA damage in mice organs. DNA and Cell Biology. 27: 1–8.
9
10. https://www.diversityarrays.com/files/DArT_DNA_isolation.pdf
10
11. Painting K (1995) Introduction to collecting, training support materials, the international plant genetic Resources Institute. Rome. 233 p.
11
12. Andersen J and Lubberstedt T (2003) Functional markers in plants. Trends in Plant Science. 8: 554-560.
12
13. Rao V and Hodgkin T (2002) Genetic diversity and conservation and utilization of plant genetic resources. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 68: 1-19.
13
14. Rashed-Mohassel HM (2007) Saffron from wild to the field. Acta Horticulturae. 739: 187-194.
14
15. Rechinger KH (1969) Iridaceae, in: Rechinger K.H. (ed), Flora Iranica. Akademische Druck-u, Verlgsantalt, Graz, Austria. 66: 187-203.
15
16. Rubio-Moraga A, Castillo-López R, Gomez-Gomez L and Ahrazem O (2009) Saffron is a monomorphic species as revealed by RAPD, ISSR and microsatellite analyses. BMC Research Notes. 2(189): 1-5.
16
17. Rubio Moraga A, Trapero-Mozos A, Gemez-Gemez L and Ahrazem O (2010) Intersimple sequence repeat markers for molecular characterization of Crocus cartwrightianus cv. Albus. IndustrialCrops and Products. 32: 147-151.
17
18. Saxena R and Chandra A (2010) Isozyme, ISSR and RAPD profiling of genotypes in marvel grass (Dichanthium annulatum). Environmental Biology. 31(6): 883-890.
18
19. Safipouriyan A, Amir Shekari H, Rajabian T and Fotokian H (2011) The evaluation of time of corms lifting (Harvesting) and foliar nutriton on some morphological and chemical yield of saffron (Crocus sativus L.). Advances in Environmental Biology. 5(2): 243-247.
19
ORIGINAL_ARTICLE
چکیده های انگلیسی
https://jacb.ut.ac.ir/article_53830_1d4229740d0fc0800d54449e581331ba.pdf
2014-05-22
1
9